一、蜂胶胶囊长期毒性试验(论文文献综述)
韩姝,孙淑珍,尹彧[1](2019)在《蜂胶食用安全性研究概况》文中研究指明近年来,蜂胶作为一种多功能性物质,已被开发成多种保健食品。蜂胶有很高的营养价值和保健作用,很受消费者喜爱。本文综述了蜂胶的毒理性和安全性,指出蜂胶是一种低毒性的天然产品,可以安全地用于食品、医药等方面。
韩姝,孙淑珍,尹彧[2](2019)在《蜂胶食用安全性研究概况》文中研究说明近几年以来,蜂胶作为一种多功能性的物质,已被开发成许多种保健食品。蜂胶有很高的营养价值和保健作用,很受消费者喜爱。本文综述了蜂胶的毒理性和安全性,指出蜂胶是一种低毒性的天然产品,可以安全的用于食品、医药等方面。
陆俊[3](2018)在《鸭儿芹黄酮类化合物提取分离及生物活性研究》文中提出鸭儿芹是一种伞形科多年生草本植物,主要分布于我国东北地区、陕西省、云南省和湖南省等地区,是一种药食两用的野生蔬菜,具有特殊的芳香味,其嫩苗及嫩茎叶可作蔬菜,也可作为中草药治疗肺炎、皮肤毒疮等疾病,研究表明鸭儿芹含有多种活性成分而黄酮是其主要的活性成分之一。目前,对于鸭儿芹的研究主要侧重于栽培,对于其活性成分的报道也集中在精油方面,关于其黄酮类物质提取方法的优化、所含黄酮类物质的分析鉴定和生物活性作用机制等方面的研究相对匮乏。因此本研究采用微波辅助技术、超声波辅助技术和酶法辅助技术对鸭儿芹黄酮提取工艺进行了优化研究;利用大孔树脂确定了分离鸭儿芹黄酮的最佳工艺条件;利用UPLC-ESI-MS/MS联用技术,对鸭儿芹不同提(萃)取物中黄酮类化合物进行了定性和定量分析;测定了鸭儿芹不同方法提取(萃)物体外抗氧化、抗菌活性;采用脂多糖诱导鼠巨噬细胞(RAW264.7)为模型,利用ELISA,RT-qPCR,Western blot及荧光素酶报告基因技术对鸭儿芹不同极性萃取物抗炎活性及抗炎机理进行了研究。研究结果为鸭儿芹的的综合利用提供了科学依据,具有一定的实际指导意义。主要研究结果如下:(1)鸭儿芹黄酮提取工艺优化实验结果表明,微波辅助、超声波辅助和酶法辅助提取三种方法在各自优化条件下黄酮得率分别为27.01±0.66,33.11±4.54和47.62±5.86mg/g。综合比较可知,三种提取方法,酶法辅助提取黄酮得率远高于超声波辅助提取和微波辅助提取得率,但用时较长,且工艺相对复杂和繁琐。活性成分分析和生物活性作用研究表明超声波辅助提取比酶法辅助提取更有利于鸭儿芹活性成分的释放和抗氧化、抗菌作用的增强。以大孔树脂比吸附量、吸附率、比解吸量以及解吸率为指标,从6种大孔树脂中筛选出最适大孔树脂LS-46D,通过动态吸附-解吸试验考察其分离黄酮的最佳条件。结果表明其最佳分离条件为:上样液浓度5.07~6.02 mg/mL之间,吸附流速3.0mL/min,径高比1:6,先用蒸馏水洗至无色,再用70%的乙醇在洗脱流速为2.0 mL/min的条件下洗脱150 mL洗脱液,回收率达98.84%,纯度提高了3.5倍。(2)鸭儿芹不同提(萃)取物UPLC-ESI-MS/MS检测结果表明,鸭儿芹含有木犀草素、芹菜素、香叶木素3种黄酮和没食子酸、绿原酸、香草酸、咖啡酸、对香豆酸、阿魏酸6种酚酸。其中木犀草素、芹菜素、对香豆酸和没食子酸、绿原酸是主要成分。所有样品中以乙酸乙酯萃取物、超声波提取物和正丁醇萃取物所含的活性成分种类及含量相对较高。尤其是木犀草素含量最多,其在这三个样品中的含量分别达到了 106806.1,20267.9和5072.7μg/g。芹菜素含量居第二位高,分别在这三个样品的含量分别为13780.8,1346.0和1157.2μg/g。(3)体外抗氧化活性实验表明抗氧化能力μ与其黄酮和多酚的含量呈极显着相关。九种样品中,EAF的抗氧化能力最好,其DPPH,ABTS和还原力的IC50分别为0.08±0.05 mg/mL,3.62±1.36 μg/mL 和 0.44±0.11 mg/mL,接近对照品 Vc。抗菌试验结果表明九种样品均具有一定的抗菌活性,其中,EAF的抑菌效果最好,当EAF浓度在800 mg/g时对大肠杆菌(Escherichia coli,E.coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、乙型溶血性链球菌β-hemolytic streptococcus)的抑菌圈直径分别达到了 21.13 ±0.16 mm,16.11±0.75 mm,17.15±2.05mm和20.78±0.03mm;其最低抑菌浓度(MIC),除乙型溶血型链球菌为50 mg/mL,其余三种细菌均小于12.5 mg/mL。结合UPLC-MS/MS分析表明乙酸乙酯萃取片段是鸭儿芹主要的生物活性部位,且木犀草素、芹菜素和对香豆酸等是鸭儿芹发挥抗氧化和抗菌活性的主要活性成分。(4)酶联免疫吸附(ELISA)实验表明乙酸乙酯萃取物(EAF)、石油醚萃取物(PEF)、正丁醇萃取物(NBF)三个部位在浓度为20~100μg/mL时,水溶性萃取物(AQF)在浓度为 200~600 μg/mL 时对 LPS 诱导的小鼠 RAW264.7 细胞 NO、IL-1β、IL-6、TNF-α的释放均有一定程度的抑制作用。RT-qPCR、Western blot及荧光素酶报告基因检测实验结果表明鸭儿芹发挥抗炎作用的机理是通过抑制LPS诱导RA264.7细胞NF-κB的转录活化,下调IL-1β、IL-6、TNF-α mRNA产生及其蛋白质的表达而产生抗炎活性。结合活性成分分析可知其抗炎的主要成分是木犀草素、芹菜素和对香豆酸等活性成分。
程吉云[4](2018)在《三种昆虫总黄酮提取条件优化及抑菌效果研究》文中提出黄酮具有多方面的医疗作用,能够抗氧化,保持血管的弹性,可扩张血管,抑制血小扳活化因子,可治疗心脑血管疾病,改善脑循环,保护大脑,可治疗肾病综合症,糖尿病,血管型痴呆等疾病。提取黄酮化合物是一项特别重要的工作,现在一般都是从昆虫中提取,因为昆虫这种生物繁衍速度比较快,并且对于农作物的发展也有很大的积极作用,所以从昆虫中提取黄酮化合物不失为一个好办法,但是问题在于现在的技术还有一定的缺陷,从昆虫中提取化合物的效率比较低,所以在发展过程中,如何有效的生产出黄酮化合物也是一项重点需要攻克的内容。为此,通过用不同有机溶剂对美洲大蠊,稻蝗,芫菁三种昆虫黄酮提取,为建立昆虫类黄酮提取方法提供有效参考;通过参考从稻蝗身上分离提取黄酮的实验方法,探究昆虫体内分离黄酮;通过测定美洲大蠊,稻蝗,芫菁三种昆虫体内提取黄酮对抑菌作用效果的研究,为今后美洲大蠊,稻蝗,芫菁在抑菌抗菌方面有利帮助。通过实验得到结论主要如下:(1)美洲大蠊,稻蝗,芫菁三种昆虫黄酮含量的测定:(1)美洲大蠊黄酮含量在16.0 mg/g-19.7 mg/g(2)稻蝗的黄酮化合物含量相对美洲大蠊略低一些,在3.79mg/g-18.6mg/g;(3)芫菁的黄酮化合物含量在4.12mg/g-18.5mg/g。(2)美洲大蠊,稻蝗,芫菁三种昆虫黄酮最佳提取条件的确定:(1)通过对不同温度、不同提取时间和不同料液比的提取效果进行对比分析,综合考虑各种因素,最终确定美洲大蠊黄酮提取最好的实验环境为:提取温度为50℃,提取时间为12h,料液比为1:8。(2)通过对不同提取温度、不同提取时间和不同料液比的提取效果进行对比分析,综合考虑各种因素,最终确定稻蝗黄酮类化合物最佳提取条件为:提取温度为50℃,提取时间为8h,料液比为1:12。(3)通过对不同提取温度、不同提取时间和不同料液比的提取效果进行对比分析,综合考虑各种因素,最终确定芫菁黄酮类化合物最佳提取条件为:提取温度为50℃,提取时间为12h,料液比为1:8。(3)对于美洲大蠊、稻蝗、芫菁三种昆虫的黄酮类物质分离提取,其浓度越高,也能够对大肠杆菌起到显着的抑制作用,即黄酮浓度与阻碍大肠杆菌繁殖的作用成正比;浓度相同的情况下,美洲大蠊提取的黄酮类化合物抑菌效果最佳,稻蝗次之,芫菁的抑菌效果最弱。
王凯,张翠平,胡福良[5](2013)在《2012年国内外蜂胶研究概况(二)》文中进行了进一步梳理(接2013年第05期)2.3蜂胶的安全性由于蜂胶近年来的应用越来越广泛,合理、安全地使用蜂胶也是当前国内外研究人员关注的重点内容。2.3.1蜂胶中的重金属蜂胶在生产过程中有可能被重金属污染(如胶源中的植物成分来源于重金属污染严重的地区),而消费者长期食用或使用受重金属污染的蜂胶产品会造成重金属在体内富集,危害健康。因此,如何更准确、
李东[6](2013)在《禽用蜂胶口服液的毒理学研究》文中研究说明蜂胶是蜜蜂采集植物芽孢或树干上的树脂,混入其上腭腺、蜡腺的分泌物,经蜜蜂反复代谢合成的一种具有芳香气味的胶状固体物。蜂胶具有抗菌、抗病毒、抗氧化、增强免疫、抑制肿瘤、降血糖、降血脂、促进组织再生等药理作用,并且无毒副作用,已被广泛用于医疗保健、食品工业、日化工业等众多领域。在兽医上蜂胶主要作为饲料添加剂和免疫佐剂使用,畜禽专用的蜂胶制剂比较少。本文对一种新研制的禽用蜂胶口服液制剂的临床用药安全性进行了临床前药物毒理学评价,以期为该口服液的临床试验提供可靠的参考。1.禽用蜂胶口服液的急性毒理学研究目的:评价蜂胶口服液的急性毒性,为亚慢性毒性和致突变试验提供参考。方法:分别以小鼠、大鼠为试验动物,采用改良寇氏法,经口灌胃给药,测定禽用蜂胶口服液的半数致死量(LD50)及其95%可信限。结果:受试蜂胶口服液的小鼠经口LD50为1589mg-kg-1体重,95%可信限为1425.5~1770.3mg·kg-1体重;大鼠的经口LD50为1633mg-kg-1体重,95%可信限为1467.4~1817.4mg-kg-1体重。结论:根据化学物急性毒性剂量分级表,该蜂胶口服液为低毒。2.禽用蜂胶口服液的亚慢性毒性研究目的:通过大鼠30d喂养试验,评价蜂胶口服的亚慢性毒性。方法:将SD大鼠随机分为四组,分别给予200mg-kg-1、100mg·kg-1、50mg·kg-1的蜂胶口服液以及蒸馏水,灌胃给药,连续30d,观察大鼠的一般状况、体重、饲料利用率、血液学及生化指标、脏器系数及组织病理学变化。结果:各组试验大鼠一般状况良好,未出现明显的中毒症状及死亡,体重、饲料利用率、血液学及生化指标、脏器系数及组织病理学检查也未见明显异常。结论:在受试剂量范围内,该蜂胶口服液对大鼠没有明显的毒性作用,可以长期服用。3.禽用蜂胶口服液的致突变试验目的:通过小鼠精子畸形试验和骨髓微核试验,初步评价蜂胶口服液是否具有致突变作用。方法:均以蜂胶口服液小鼠经口LD50的1/2、1/4和1/8设三个剂量组,以及阴性对照组和阳性对照组,小鼠精子畸形试验连续给药5天,于第一次给药后第35天进行采样、制片,观察各组精子畸形情况;小鼠骨髓微核试验采用两次染毒法,间隔24h,于第二次给药后6h采样、制片,观察各组小鼠骨髓PCE细胞微核情况。结果:蜂胶口服液各试验组精子畸形率与阴性对照组差异不显着(P>0.05),而阳性对照组精子畸形率与阴性对照组差异极显着(P<0.01);蜂胶口服液各试验组的PCE细胞微核率与阴性对照组差异不显着(P>0.05),阳性对照组PCE细胞微核率与阴性对照组差异极显着(P<0.01)。结论:蜂胶口服液的小鼠精子畸形试验和骨髓微核试验均呈阴性,表明受试蜂胶口服液在试验剂量范围内没有致突变作用。
周波[7](2013)在《蜂胶灵芝复方降血脂作用的研究》文中研究表明本研究以高血脂小鼠血清TC、TG、LDL-C和HDL-C水平以及体重和肝体比作为评价指标,比较蜂胶醇提物、灵芝水提物及其复方的降血脂效果,确定降血脂最佳的蜂胶灵芝复方的配比和剂量。主要实验内容和结果如下:1.蜂胶灵芝复方配方初筛实验:以小鼠为实验动物,研究蜂胶醇提物、灵芝水提物及其复方对小鼠血脂水平的影响。实验分为19组,分别为正常对照组,溶剂对照组,高脂对照组,药物对照组(180mg/kg),蜂胶醇提物低、中、高剂量组(100,200,600mg/kg),灵芝水提物低、中、高剂量组(150,300,900mg/kg),复方100+150mg/kg、100+300mg/kg、100+900mg/kg、200+150mg/kg、200+300mg/kg、200+900mg/kg、600+150mg/kg、600+300mg/kg、600+900mg/kg剂量组。连续灌胃4周后,测定各组小鼠血清TC、TG、LDL-C、HDL-C、体重和肝重并进行比较。结果:初步确定最佳降血脂组为蜂胶灵芝复方200+900mg/kg、600+150mg/kg、600+300mg/kg、600+900mg/kg剂量组。2.蜂胶灵芝复方初筛配方验证实验:以小鼠为实验动物,对蜂胶灵芝复方200+900mg/kg、600+150mg/kg、600+300mg/kg、600+900mg/kg剂量组的降血脂功能进行验证。实验分为8组,分别为正常对照组,溶剂对照组,高脂对照组,药物对照组(180mg/kg),复方200+900mg/kg、600+150mg/kg、600+300mg/kg、600+900mg/kg剂量组。连续灌胃4周后,测定各组小鼠血清TC、TG、LDL-C HDL-C、体重和肝重,所得结果与初筛实验进行比较。结果:蜂胶灵芝复方600+150mg/kg剂量组的配比(蜂胶:灵芝=4:1)为最佳配比。3.蜂胶灵芝复方降血脂剂量的研究:以小鼠为实验动物,研究蜂胶灵芝复方(配比为蜂胶:灵芝=4:1)降血脂的最佳剂量。实验分为9组,分别为正常对照组,溶剂对照组,高脂对照组,药物对照组(180mg/kg),复方250mg/kg、375mg/kg、750mg/kg、1500mg/kg、2250mg/kg剂量组。连续灌胃4周后,测定各组小鼠血清TC、TG、LDL-C、HDL-C、体重和肝重并进行比较。结果:蜂胶灵芝复方的剂量为375mg/kg时,对小鼠的降血脂效果最佳。4.蜂胶灵芝复方的急性毒性实验:以小鼠为实验动物,采用动物试验方法对蜂胶灵芝复方进行急性经口毒性研究。实验分为6组,每组10只,雌雄各半分别为空白对照组,溶剂对照组,复方1500mg/kg、3000mg/kg、4500mg/kg、6000mg/kg剂量组。随后采用一次性灌胃给药来研究蜂胶灵芝复方对小鼠的毒性反应。结果:蜂胶灵芝复方对小鼠急性毒性实验LD50>6000mg/kg,属实际无毒级。因此,食用蜂胶灵芝复方是安全的。
王凯,张翠平,胡福良[8](2013)在《2012年国内外蜂胶研究概况》文中认为本文对2012年国内外蜂胶的研究概况进行了综述,对公开发表的278篇中英文文献和7篇硕士学位论文的研究领域、地域分布、刊物分布等情况进行了统计分析和评价,并重点介绍了蜂胶的药理活性、化学成分、质量控制、安全性及在农牧业等方面应用的研究新进展,同时也介绍了2012年国内外蜂胶相关专利的公开情况。
于德伟,陈文学,林贺,杨铭,杨明[9](2012)在《五年生鲜人参毒理学研究》文中研究指明目的对五年生鲜人参的食用安全性进行毒理学评价。方法采用小鼠、大鼠急性经口毒性试验、遗传毒性试验(Ames试验、小鼠骨髓细胞微核试验、小鼠精子畸形试验)、大鼠30d喂养试验。结果雌、雄小鼠与大鼠经口最大耐受剂量(MTD)均大于19.2g/kg.bw。3项遗传毒性试验结果均为阴性,表明该受试物无致突变作用。在大鼠30 d喂养试验中,实验动物均生长发育良好,体质量、摄食量、饮水量、血液学、血液生化学、脏器系数及病理组织学相关指标均未见异常变化。结论五年生鲜人参属于实际无毒物,未见遗传毒性,长期服用安全。
王凤忠[10](2011)在《蜂胶王浆软胶囊制备、功能评价及全程质量控制体系研究》文中提出保健食品在我国有着悠久的历史。我国自古有“药食同源”之说。因此中医单纯使用食物,或食物与药物相结合来进行营养保健、调理康复的情况极其普遍。蜂胶、蜂王浆作为我国传统保健食品,得到广泛应用。探讨复合型蜂胶王浆软胶囊的生产工艺,并结合全程质量控制体系,研究各生产工艺的危害分析关键控制点,探索蜂胶王浆软胶囊加工的关键技术,对于丰富蜂产品的品种具有一定的意义。本文研究了蜂胶原料除铅工艺的各影响因素对蜂胶中铅含量的影响,100g蜂胶原料加入2 L 75%的乙醇,浸泡48小时后取上部溶液,蜂胶中的铅含量为0.189mg/kg,为最佳提取工艺。乙醇加量、乙醇浓度、浸泡时间、提取次数对蜂胶提取率的影响结果表明,蜂胶原料加6倍量乙醇浸提3次,浸泡48小时为蜂胶最佳提取工艺。以沉降比作为主要考察指标,筛选出蜂胶王浆:PEG红花油的比例以及蜂蜡用量。最佳配比为蜂胶:王浆:PEG:红花油:蜂蜡=20:25:50:10:4。以囊壳溶出速率作为指标,探讨明胶、甘油、PEG的比例。得到回归方程:Y=-16.96+50.96* X1-30.80* X12+0.013* X22;N=5,s=0.044,F=269.77(P<0.05)方程显着。系统研究了不同温度、湿度对软胶囊崩解时限的影响,结果表明干燥时间在20-24小时,干燥温度应在22±2℃相对湿度在20±2%时,囊壳水分较低,崩解时间最短。另外本文还研究了山梨醇、甘露醇、柠檬酸、L-半胱氨酸、丁烯二酸、PEG、脱水山梨醇混合液对胶囊崩解时间的影响,得到各最佳添加浓度为:山梨醇8%-10%;甘露醇4%-5%;柠檬酸6%;L-半胱氨酸5%;丁烯二酸1%;PEG 5%;脱水山梨醇混合液6%-8%。稳定性试验表明产品的推荐保存期为24个月。按保健食品功能评价程序进行了延缓衰老、调节血脂作用、急性毒性和致突变性试验和大剂量饲喂试验。结果表明蜂胶王浆软胶囊能明显提高大鼠血清SOD、GSH-Px活力,并能降低大鼠MDA的含量,具备延缓衰老作用。连续30天灌胃血脂测定,结果显示,高、中剂量组高密度脂蛋白胆固醇含量明显高于对照组,高密度脂蛋白胆固醇分别升50.0%、31.6%。高、中、低剂量组大鼠血清甘油三酯明显低于对照组,甘油三酯分别降低47.6%、45.7%、42.1%。高、中、低剂量组大鼠血清胆固醇明显低于对照组,胆固醇分别降低57.9%、54.3%、42.0%。表明蜂胶王浆软胶囊具有调节血脂作用。Ames试验、骨髓微核试验和小鼠精子畸形试验结果均为阴性。产品对哺乳动物体细胞、雄性生殖细胞无致突变作用,故该产品无致突变作用。连续30天经口给予大鼠蜂胶王浆软胶囊(相当于人实际用量的8、32和128倍)。大鼠的体重没有影响,食物利用率无影响。文章最后根据危害分析单中确定的显着危害,采用HACCP原理,结合产品特点及生产经验,确定了关键控制点,并根据具体情况制定了关键限值。蜂胶王浆软胶囊生产的关键控制点为:原料接收、物料称量以及均质混合。关键限制为原料中红花油酸价(以脂肪计)≤30.0;过氧化物(以脂肪计)≤12.0细菌总数≤1000个/克,致病菌不得检出;蜂胶中重金属(以Pb计,mg/kg)≤1.0,王浆冻干粉重金属(以Pb计,%)≤0.001,10-HDA≥4.0%;物料称量中配料秤精度:感量:60kg电子秤5g,1kg电子秤0.5g;均质混合过程时间搅拌30min,温度≤40℃。
二、蜂胶胶囊长期毒性试验(论文开题报告)
(1)论文研究背景及目的
此处内容要求:
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例:
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
(2)本文研究方法
调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、蜂胶胶囊长期毒性试验(论文提纲范文)
(3)鸭儿芹黄酮类化合物提取分离及生物活性研究(论文提纲范文)
摘要 |
ABSTRACT |
缩略词 |
第一章 绪论 |
1.1 鸭儿芹概述 |
1.2 鸭儿芹植物化学成分 |
1.2.1 挥发油 |
1.2.2 黄酮类化合物 |
1.2.3 三萜类化合物 |
1.2.4 有机酸及酚类化合物 |
1.2.5 其它成分 |
1.3 鸭儿芹生理药理作用 |
1.3.1 抗氧化作用 |
1.3.2 抗菌作用 |
1.3.3 抗肿瘤作用 |
1.3.4 护肝作用 |
1.3.5 其它作用 |
1.4 黄酮类化合物的分类及理化性质 |
1.4.1 黄酮类化合物的分类 |
1.4.2 黄酮类化合物的理化性质 |
1.5 黄酮类化合物的提取 |
1.5.1 溶剂萃取法 |
1.5.2 酶法辅助提取 |
1.5.3 超声波辅助提取 |
1.5.4 微波辅助提取 |
1.5.5 超临界CO_2萃取 |
1.5.6 高速逆流色谱 |
1.5.7 其它方法 |
1.6 黄酮类化合物的分离纯化 |
1.6.1 大孔树脂分离纯化 |
1.6.2 聚酰胺纯化 |
1.6.3 葡聚糖凝胶柱层析法 |
1.6.4 膜分离技术 |
1.6.5 其它纯化技术 |
1.7 黄酮类化合物的生物活性 |
1.7.1 抗氧化清除自由基活性 |
1.7.2 抑菌抗病毒作用 |
1.7.3 抗炎作用 |
1.7.4 抗肿瘤作用 |
1.7.5 降血脂降血糖作用 |
1.7.6 其它作用 |
1.8 黄酮类化合物的应用 |
1.8.1 天然抗氧化剂 |
1.8.2 保健食品 |
1.8.3 食用色素 |
1.8.4 天然风味增强剂 |
1.8.5 医药和化妆品 |
1.9 研究的目的、意义及研究内容 |
1.9.1 研究的目的和意义 |
1.9.2 研究的主要内容 |
1.9.3 技术路线 |
第二章 鸭儿芹黄酮类化合物提取分离工艺优化研究 |
2.1 材料与方法 |
2.1.1 实验材料 |
2.1.2 实验试剂 |
2.1.3 仪器与设备 |
2.1.4 实验方法 |
2.2 结果 |
2.2.1 响应面法优化微波辅助提取鸭儿芹黄酮 |
2.2.2 响应面法优化超声波辅助提取鸭儿芹黄酮 |
2.2.3 正交法优化酶辅助提取鸭儿芹黄酮 |
2.2.4 不同提取方法的比较 |
2.2.5 大孔树脂分离工艺结果 |
2.3 讨论 |
2.4 小结 |
第三章 鸭儿芹黄酮类化合物的鉴定及含量检测 |
3.1 材料与方法 |
3.1.1 实验试剂 |
3.1.2 仪器与设备 |
3.1.3 实验方法 |
3.2 结果 |
3.2.1 质谱分析 |
3.2.2 黄酮和酚酸类化合物的鉴定 |
3.2.3 方法线性范围、相关系数、检测限、定量限和精密度 |
3.2.4 不同提(萃)取物黄酮和酚酸类化合物含量的比较 |
3.3 讨论 |
3.4 小结 |
第四章 鸭儿芹黄酮类化合物抗氧化与抗菌活性研究 |
4.1 材料与方法 |
4.1.1 实验材料 |
4.1.2 实验试剂 |
4.1.3 仪器与设备 |
4.1.4 实验方法 |
4.2 结果 |
4.2.1 不同提(萃)取物黄酮,多酚含量 |
4.2.2 鸭儿芹黄酮类化合物抗氧化活性 |
4.2.3 鸭儿芹黄酮类化合物抗菌活性 |
4.3 讨论 |
4.4 小结 |
第五章 鸭儿芹黄酮类化合物抗炎活性及机理研究 |
5.1 材料与方法 |
5.1.1 实验材料 |
5.1.2 实验试剂 |
5.1.3 仪器与设备 |
5.1.4 实验方法 |
5.2 结果 |
5.2.1 不同极性萃取物对RAW264.7细胞的毒性 |
5.2.2 不同极性萃取物对LPS诱导RAW264.7细胞释放NO的影响 |
5.2.3 不同极性萃取物对LPS诱导RAW264.7细胞炎症因子分泌的影响 |
5.2.4 RT-qPCR检测炎症相关基因mRNA表达 |
5.2.5 EAF对LPS诱导的RAW264.7蛋白表达水平的影响 |
5.2.6 报告基因检测转染后RAW264.7细胞NF-κB的活性 |
5.3 讨论 |
5.4 小结 |
第六章 结论与展望 |
6.1 结论: |
6.2 创新点 |
6.3 展望 |
参考文献 |
攻读学位期间的主要学术成果 |
致谢 |
(4)三种昆虫总黄酮提取条件优化及抑菌效果研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
前言 |
3.1 研究背景及意义 |
3.2 研究目的 |
文献综述 |
4.1 黄酮研究进展 |
4.2 昆虫研究进展 |
材料与方法 |
5.1 材料 |
5.2 实验方法 |
结果与讨论 |
6.1 三种昆虫总黄酮含量的测定 |
6.2 三种昆虫体内黄酮含量的有效提取量的确定 |
6.3 三种昆虫黄酮提取物的大肠杆菌抑菌实验 |
结论 |
7.1 美洲大蠊,稻蝗,芫菁三种昆虫黄酮含量的测定 |
7.2 美洲大蠊,稻蝗,芫菁三种昆虫黄酮最佳提纯手段的确定 |
7.3 三种昆虫抑菌效果 |
参考文献 |
致谢 |
攻读学位期间发表的学术成果 |
附图 |
(5)2012年国内外蜂胶研究概况(二)(论文提纲范文)
2.3蜂胶的安全性 |
2.3.1蜂胶中的重金属 |
2.3.2蜂胶中的农药残留检测 |
2.3.3蜂胶引起的过敏 |
2.3.4安全性评价实验 |
2.4蜂胶的应用 |
2.4.1蜂胶在畜禽养殖中的应用 |
2.4.2蜂胶在免疫佐剂中的应用 |
2.4.4蜂胶在口腔保健中的应用 |
3蜂胶专利公布情况 |
4结语 |
(6)禽用蜂胶口服液的毒理学研究(论文提纲范文)
目录 |
摘要 |
ABSTRACT |
符号及缩略语说明 |
引言 |
第一章 文献综述 |
1 蜂胶概述 |
1.1 蜂胶的理化性质 |
1.2 蜂胶的活性成分 |
2 蜂胶的药理活性 |
2.1 抗菌活性 |
2.2 抗病毒活性 |
2.3 增强免疫力 |
2.4 抗氧化与清除自由基 |
2.5 抑制癌症抗肿瘤 |
2.6 降血糖与降血脂 |
2.7 其他作用 |
3 蜂胶的安全性 |
3.1 蜂胶中的重金属及农药残留 |
3.2 蜂胶的过敏反应 |
3.3 蜂胶的毒理学研究 |
4 蜂胶在畜牧兽医领域的应用 |
4.1 提高生产性能 |
4.2 增强免疫力 |
4.3 治疗畜禽疾病 |
5 蜂胶在其他领域的应用 |
5.1 在食品保鲜中的应用 |
5.2 在口腔保健中的应用 |
5.3 在化妆品中的应用 |
6 展望 |
参考文献 |
第二章 蜂胶口服液的急性毒理学研究 |
摘要 |
试验一 蜂胶口服液的小鼠急性毒性试验 |
1 材料及方法 |
2 结果 |
3 讨论 |
4 结论 |
试验二 蜂胶口服液的大鼠急性毒性试验 |
1 材料及方法 |
2 结果 |
3 讨论 |
4 结论 |
参考文献 |
ABSTRACT |
第三章 蜂胶口服液的亚慢性毒性研究 |
摘要 |
1 材料与方法 |
1.1 试验材料 |
1.2 试验方法 |
2 结果 |
2.1 一般临床表现 |
2.2 增重、饲料利用率及饮水量的影响 |
2.3 血液学检查结果 |
2.4 血液生化指标 |
2.5 对大鼠脏器系数的影响 |
2.6 病理检查结果 |
3 讨论 |
3.1 蜂胶口服液对大鼠一般情况的影响 |
3.2 蜂胶口服液对大鼠血液学及血清生化指标的影响 |
3.3 蜂胶口服液对大鼠脏器系数的影响 |
3.4 病理检查结果 |
4 结论 |
参考文献 |
ABSTRACT |
第四章 蜂胶口服液的致突变试验 |
摘要 |
试验一 蜂胶口服液的小鼠精子畸形试验 |
1 材料与方法 |
2 结果 |
3 讨论 |
4 结论 |
试验二 蜂胶口服液的小鼠骨髓细胞微核试验 |
1 材料与方法 |
2 结果 |
3 讨论 |
4 结论 |
参考文献 |
ABSTRACT |
全文结论 |
附录 |
致谢 |
(7)蜂胶灵芝复方降血脂作用的研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
第一章 文献综述 |
1 蜂胶和灵芝的研究进展 |
1.1 蜂胶的概述 |
1.2 灵芝的概述 |
1.3 蜂胶和灵芝的生理活性 |
1.3.1 蜂胶的生理活性 |
1.3.2 灵芝的生理活性 |
2 降血脂作用概述 |
2.1 高血脂 |
2.2 降血脂的研究进展 |
2.3 降血脂机理简述 |
3 本研究的目的和意义 |
4 本研究的主要内容 |
第二章 蜂胶、灵芝及其复方降血脂功能的研究 |
1 材料与仪器 |
1.1 实验原料 |
1.2 实验试剂 |
1.3 实验仪器 |
1.4 实验动物 |
2 试验方法 |
2.1 灵芝的提取 |
2.2 灵芝水提取物的制备 |
2.3 动物实验分组和给药 |
2.3.1 配方初筛实验 |
2.3.2 初筛配方验证实验 |
2.4 小鼠血清样本的采集和生化分析 |
2.5 统计分析 |
3 结果与分析 |
3.1 灵芝水提取物的提取率 |
3.2 配方初筛实验结果与分析 |
3.2.1 蜂胶、灵芝及蜂胶灵芝复方对小鼠体重的影响 |
3.2.2 蜂胶、灵芝及蜂胶灵芝复方对小鼠肝脏的影响 |
3.2.3 蜂胶、灵芝及蜂胶灵芝复方对小鼠血清TC的影响 |
3.2.4 蜂胶、灵芝及蜂胶灵芝复方对小鼠血清TG的影响 |
3.2.5 蜂胶、灵芝及蜂胶灵芝复方对小鼠血清HDL-C的影响 |
3.2.6 蜂胶、灵芝及蜂胶灵芝复方对小鼠血清LDL-C的影响 |
3.3 初筛配方验证实验结果与分析 |
3.3.1 蜂胶灵芝复方对小鼠体重的影响 |
3.3.2 蜂胶灵芝复方对小鼠肝脏的影 |
3.3.3 蜂胶灵芝复方对小鼠血清TC的影响 |
3.3.4 蜂胶灵芝复方对小鼠血清TG的影响 |
3.3.5 蜂胶灵芝复方对小鼠血清HDL-C的影响 |
3.3.6 蜂胶灵芝复方对小鼠血清LDL-C的影响 |
4 结论 |
4.1 配方初筛实验 |
4.2 初筛配方验证实验 |
第三章 蜂胶灵芝复方降血脂剂量的确定 |
1 材料与仪器 |
1.1 实验原料 |
1.2 实验试剂 |
1.3 实验仪器 |
1.4 实验动物 |
2 试验方法 |
2.1 灵芝的提取 |
2.2 灵芝水提取物的制备 |
2.3 动物实验分组和给药 |
2.4 小鼠血清样本的采集和生化分析 |
2.5 统计分析 |
3 结果与分析 |
3.1 蜂胶灵芝复方对小鼠体重的影响 |
3.2 蜂胶灵芝复方对小鼠肝脏的影响 |
3.3 蜂胶灵芝复方对小鼠血清TC的影响 |
3.4 蜂胶灵芝复方对小鼠血清TG的影响 |
3.5 蜂胶灵芝复方对小鼠HDL-C的影响 |
3.6 蜂胶灵芝复方对小鼠LDL-C的影响 |
4 结论 |
第四章 蜂胶灵芝复方的急性毒性试验 |
1 材料与仪器 |
1.1 实验原料 |
1.2 实验试剂 |
1.3 实验仪器 |
1.4 实验动物 |
2 试验方法 |
2.1 灵芝的提取 |
2.2 灵芝水提取物的制备 |
2.3 动物实验分组和给药 |
2.4 检测指标及测定方法 |
2.4.1 中毒症状及存活情况的观察 |
2.4.2 体重及摄食量的测定 |
2.4.3 小鼠的解剖 |
2.5 统计分析 |
3 结果与分析 |
3.1 中毒症状及存活情况的统计结果 |
3.2 蜂胶灵芝复方对小鼠体重及摄食量的影响 |
3.3 小鼠的解剖情况 |
4 结论 |
第五章 结论和展望 |
1 结论 |
2 展望 |
参考文献 |
致谢 |
(10)蜂胶王浆软胶囊制备、功能评价及全程质量控制体系研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
第一章 绪论 |
1.1 研究目的、意义 |
1.2 蜂胶的国内外研究进展 |
1.3 蜂王浆的国内外研究进展 |
1.4 软胶囊的国内外研究进展 |
1.5 全程质量控制体系现状 |
1.6 研究思路 |
1.7 研究的内容与目标 |
第二章 蜂胶除铅关键技术与最佳制备工艺研究 |
2.1 前言 |
2.2 材料与方法 |
2.2.1 材料 |
2.2.2 方法 |
2.3 结果与分析 |
2.3.1 蜂胶除铅工艺研究 |
2.3.2 蜂胶中黄酮最佳提取工艺研究 |
2.4 结论 |
第三章 蜂胶王浆软胶囊成型工艺研究 |
3.1 前言 |
3.2 材料与方法 |
3.2.1 材料 |
3.2.2 仪器 |
3.2.3 方法 |
3.3 结果与分析 |
3.3.1 内容物最佳配比的研究 |
3.3.2 内容物中蜂蜡含量研究 |
3.3.3 胶囊壳配比研究 |
3.3.4 干燥时间、含水量与崩解时限的关系 |
3.3.5 不同干燥条件对崩解时间的影响 |
3.3.6 山梨醇添加量对崩解时间的影响 |
3.3.7 甘露醇的添加量对崩解时间的影响 |
3.3.8 柠檬酸的添加量对崩解时间的影响 |
3.3.9 L-半胱氨酸的添加量对崩解时间的影响 |
3.3.10 丁烯二酸的添加量对崩解时间的影响 |
3.3.11 PEG400 的添加量对崩解时间的影响 |
3.3.12 脱水山梨醇混合液的添加量对崩解时间的影响 |
3.3.13 山梨醇、脱水山梨醇混合液、甘露醇混用对崩解时间的影响 |
3.3.14 洗涤剂对崩解时间的影响 |
3.3.15 稳定性试验 |
3.4 结论 |
第四章 蜂胶王浆软胶囊功能活性研究 |
4.1 前言 |
4.2 材料与方法 |
4.2.1 试剂 |
4.2.2 仪器 |
4.2.3 实验动物 |
4.2.4 菌种 |
4.2.5 方法 |
4.3 结果与分析 |
4.3.1 蜂胶王浆软胶囊对大鼠体重的影响 |
4.3.2 蜂胶王浆软胶囊对大鼠血清MDA 的影响 |
4.3.3 蜂胶王浆软胶囊对肝脏脂褐质的影响 |
4.3.4 超氧化物歧化酶(SOD)活力测定 |
4.3.5 蜂胶王浆软胶囊对谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性的影响 |
4.3.6 蜂胶王浆软胶囊对大鼠血脂的影响 |
4.3.7 蜂胶王浆软胶囊对小鼠、大鼠经口毒性影响 |
4.3.8 蜂胶王浆软胶囊的鼠伤寒沙门氏菌/哺乳动物微粒体酶试验(Ames 试验) |
4.3.9 蜂胶王浆软胶囊的小鼠骨髓细胞微核试验 |
4.3.10 蜂胶王浆软胶囊对小鼠精子致畸影响 |
4.3.11 蜂胶王浆软胶囊对大鼠食物利用率的影响 |
4.3.12 蜂胶王浆软胶囊对大鼠脏器绝对质量及相对质量(脏/体)的影响 |
4.3.13 蜂胶王浆软胶囊对大鼠血常规影响 |
4.3.14 蜂胶王浆软胶囊对血液生化指标的影响 |
4.3.15 蜂胶王浆软胶囊对大鼠病理学影响 |
4.4 结论 |
第五章 蜂胶王浆软胶囊制备全程质量控制体系研究 |
5.1 前言 |
5.2 蜂胶王浆软胶囊工业化生产工艺流程 |
5.2.1 蜂胶王浆软胶囊工业化生产工艺流程 |
5.2.2 蜂胶王浆软胶囊加工工艺描述 |
5.2.3 蜂胶王浆软胶囊加工过程的危害分析 |
5.2.4 蜂胶王浆软胶囊加工的危害预防控制措施 |
5.2.5 蜂胶王浆软胶囊加工过程危害因素的危害程度分析 |
5.2.6 蜂胶王浆软胶囊加工过程关键控制点及关键限值的确定 |
5.3 结论 |
第六章 结论 |
6.1 主要结论 |
6.2 创新点 |
6.3 不足之处 |
参考文献 |
附录:蜂胶王浆软胶囊的质量标准初稿 |
1 感官指标 |
2. 功能要求 |
3 质量指标 |
4 试验方法 |
5 检验规则 |
6 标志、包装、运输、贮存 |
致谢 |
作者简历 |
四、蜂胶胶囊长期毒性试验(论文参考文献)
- [1]蜂胶食用安全性研究概况[J]. 韩姝,孙淑珍,尹彧. 中国蜂业, 2019(07)
- [2]蜂胶食用安全性研究概况[A]. 韩姝,孙淑珍,尹彧. 2019中国蜂业博览会暨全国蜂产品市场信息交流会论文集, 2019
- [3]鸭儿芹黄酮类化合物提取分离及生物活性研究[D]. 陆俊. 中南林业科技大学, 2018(01)
- [4]三种昆虫总黄酮提取条件优化及抑菌效果研究[D]. 程吉云. 佳木斯大学, 2018(05)
- [5]2012年国内外蜂胶研究概况(二)[J]. 王凯,张翠平,胡福良. 蜜蜂杂志, 2013(06)
- [6]禽用蜂胶口服液的毒理学研究[D]. 李东. 南京农业大学, 2013(08)
- [7]蜂胶灵芝复方降血脂作用的研究[D]. 周波. 福建农林大学, 2013(03)
- [8]2012年国内外蜂胶研究概况[A]. 王凯,张翠平,胡福良. 2013年全国蜂产品市场信息交流会暨中国(浦东)蜂业博览会论文集, 2013
- [9]五年生鲜人参毒理学研究[J]. 于德伟,陈文学,林贺,杨铭,杨明. 中国热带医学, 2012(12)
- [10]蜂胶王浆软胶囊制备、功能评价及全程质量控制体系研究[D]. 王凤忠. 中国农业科学院, 2011(11)