一、固定化细胞转化木糖为木糖醇的研究（论文文献综述）
陈朵[1]（2021）在《纳米金属粒子耦合的固定化光合细菌转化PHL产氢研究》文中研究表明随着溶解浆需求量的与日俱增,预水解硫酸盐法（Pre-hydrolysis Kraft,PHK）溶解浆生产时产生的预水解液（Pre-Hydrolysis Liquor,PHL）因含有大量的半纤维素和有机质,对PHL进行高值化利用引起了研究者广泛关注。生物光发酵已被证明在废水处理、生物产氢等领域具有卓越的效果;同时,纳米颗粒因其特有的表面效应和小尺寸效应,在一些固定化性材料的制备中也得到了关注。本课题将生物光发酵和纳米材料相结合,利用光合细菌对底物的广泛适应性来同步代谢PHL中的木糖和乙酸并发酵制取氢气;同时利用纳米材料的物理特性及其对固氮酶的催化作用,以期改善和提高光发酵产氢效率和底物利用效率;最后选择合适的固定化载体构建Fe3O4-NPs@HY01复合微球,提高菌体对环境抑制物耐受性及重复利用率。首先,探究了光合细菌利用PHL中半纤维素主要降解产物木糖作为碳源时的产氢性能和最佳产氢条件。结果表明球形红细菌HY01最佳产氢条件为:细菌接种量为10%,木糖浓度为8g/L,溶液初始pH值为8,以L-谷氨酸作为氮源且浓度为8.5 mmol/L。此时,累计产氢量为4227.6mL/L。各影响因素影响产氢性能的主次顺序依次为初始pH>L-谷氨酸浓度>接种量。其次,基于纳米颗粒的加入可提高电子转移效率和固氮酶活性,从而提高产氢性能和底物利用率。本论文探究了不同金属离子和纳米金属粒子的加入对HY01产氢的影响规律。实验结果显示当Fe3+、Fe2+、2n2+和Mg2+的浓度分别为≤200 mg/L、≤15 mg/L、≤350mg/L和≤800mg/L时,均能不同程度的提高HY01的氢气产量。而少量纳米金属颗粒的添加可以达到更加明显的促进效果,当Fe3O4-NPs、ZnO-NPs和MgO-NPs添加量分别为≤200 mg/L、≤50 mg/L和≤200 mg/L时,累计产氢量分别为4700 mL/L、4483 mL/L和4624 mL/L。接着研究了 PHL中的代表性抑制物苯酚和乙酸对光合细菌HY01在生长代谢和产氢性能的影响,探究了 HY01在以木糖-苯酚作为碳源时对苯酚的耐受阈值,及木糖-乙酸作为碳源时的协同产氢代谢规律。结果表明低浓度的苯酚对光合细菌的生长和产氢具有一定的促进作用;HY01对苯酚的耐受阈值为500mg/L。小分子酸可以直接被光合细菌转化和利用,木糖和乙酸作为双碳源时产氢系统的pH自稳定性得到提高,产氢时间延长至144 h,累计产氢量高达7200 mL/L。以实际PHL中木糖、乙酸和苯酚的比例配制PHL模拟液,并进行光合细菌的产氢降解实验,得到累计产氢量为6520 mL/L,是木糖和苯酚为混合碳源时产氢量的1.8倍之多。除此之外,采用CAD-40大孔树脂对抑制物苯酚进行吸附解毒,利用树脂的快速吸附与生物降解之间形成动态平衡效应,在提高HY01对苯酚耐受性的同时,可以快速高效转化PHL并产氢。最后,选用三种生物大分子材料海藻酸钠、琼脂和卡拉胶作为光合细菌固定化载体,通过对这几种天然高分子聚合材料及其复合物的透光性、化学稳定性等性能的比较,遴选出最佳的光合细菌载体,并从接种量、固定化时间、交联剂浓度和配比等因素对固定化条件进行优化。结果显示,琼脂-卡拉胶混合凝胶为HY01最佳固定化载体,接种量为40 mL、固定化时间为60 min、KCl浓度为2%、琼脂和卡拉胶浓度分别2%（w/v）的混合物是光合细菌HY01的最佳固定化条件。以琼脂-卡拉胶混合凝胶为固定化载体构建固定化纳米Fe3O4-NPs@HY01微球,以PHL模拟液为发酵底物进行实验,分析固定化细菌微球的产氢性能、底物转化效率、抑制物耐受性以及其可重复利用性。得出固定化微球对PHL中木糖利用率可达99.45%,苯酚降解率为28.52%,可循环使用六次。通过对不同保藏方式的分析比较,并最终选择真空冷藏的方式对固定化微球进行保藏。本论文为固定化光合细菌耦合纳米金属粒子高效转化PHL并制氢提供了理论支持。
袁新松[2]（2020）在《采用CRP突变及NADPH再生强化改造大肠杆菌IS5-d生产木糖醇》文中进行了进一步梳理木糖醇是一种五碳糖醇,广泛应用于食品、医药和化工等领域,具有重要的经济价值和社会价值。生物法生产木糖醇具有转化条件温和、工艺绿色、且可以直接利用半纤维素水解液为底物等优点,有望替代目前普遍采用的化学加氢法生产木糖醇的工艺。大肠杆菌作为基因工程的理想宿主,具有遗传途径明确、培养条件简单、生长速度快、基因操作方法成熟,而且能够利用五碳糖等优点。目前,以半纤维素水解液为底物,通过大肠杆菌发酵生产木糖醇的研究已有报道,本实验室前期也已构建了木糖醇生产菌株E.coli W3110 IS5-d,但尚存在木糖在低浓度条件下吸收速率慢的问题,影响了木糖醇的时空产率,并且导致发酵液中残余木糖浓度相对较高。同时原菌株只能高效利用离子交换脱毒的半纤维素水解液,对石灰处理的半纤维素水解液的适应性有待提高。针对以上问题,本论文进行了以下工作:首先,采用CRP蛋白突变与葡萄糖磷酸化转运途径改造相结合的方法,进一步消除葡萄糖对木糖转运吸收的阻遏。论文在敲除葡萄糖磷酸化转运编码基因ptsG基础上,将CRP突变成cAMP非依赖型的CRP*（I112L,T127I,A144T）后,摇瓶发酵24h,与只敲除ptsG的出发菌株IS5-d相比,突变株的葡萄糖吸收速率降低17.4%,而木糖吸收速率提高10.5%,实现了木糖与葡萄糖吸收的完全同步,而且在木糖浓度低于5.7 g/L情况下,木糖的转运吸收速率提高了 27.3%。通过该组合策略的运用,采用离子交换脱毒的玉米芯水解液为底物,突变株IS5-dI在15L罐发酵54h,木糖醇的浓度达到163.5 g/L,时空产率达到3.03 g/L/h,对木糖得率达到1.02g/g,比同样条件下出发菌株IS5-d分别提高了 14.3%、65.6%、9.7%。在此基础上,对IS5-dI菌株利用离子交换脱毒的玉米芯水解液发酵生产木糖醇的工艺进行了优化。优化的条件为:种龄13 h;发酵温度37℃;溶氧35%（前期）,20%（后期）;玉米浆干粉初始浓度10g/L,30mL/h恒速补料;水解液补料起始为发酵后10h,维持木糖浓度基本恒定（60g/L）;控制发酵液中葡萄糖浓度不超过5g/L,连续流加补料。在优化条件下15 L罐发酵,52 h生产的木糖醇浓度为165g/L,时空产率3.17g/h,对木糖得率为1.01 g/g,达到了目前已报道的以大肠杆菌发酵半纤维素水解液的最高水平,而且发酵液中未检测到残余葡萄糖、木糖、阿拉伯糖或其他残糖。进一步,采用了一种双向调控大肠杆菌葡萄糖中央代谢路径碳流量的方法,即过表达PPP路径基因同时敲除EMP路径基因,对NADPH再生进行了强化。在IS5-d菌株的基因组插入一拷贝的zwf基因构建了 2bzwf菌株,NADPH/NADP+增大26.3%;在2bzwf菌株的基因组插入一拷贝的gnd基因构建了 2bzwfgnd菌株,NADPH/NADP+增大8.3%;敲除2bzwfgnd菌株的pgi基因构建了 2bpgi菌株,NADPH/NADP+增大46.2%。构建的工程菌2bpgi以离子交换脱毒的玉米芯水解液为底物,通过15 L罐分批补料发酵,76 h生产的木糖醇浓度为161.6 g/L,时空产率为2.13 g/L/h,对木糖得率为1.02g/g,对葡萄糖得率为2.50g/g,与出发菌株IS5-d相比分别提高了 13.0%、16.4%、9.7%和67.8%。最后,以crp*突变株IS5-dI为出发菌株,进一步对其CRP 127位的异亮氨酸进行半理性定点突变,共获得9株氨基酸极性与原始菌株IS5-d不同的突变株。以石灰处理的玉米芯水解液为发酵底物进行筛选,获得了对水解液耐受性显着提高的菌株IS5-dG。同时,对石灰中和法处理玉米芯水解液的工艺进行了全面的优化,使水解液进一步适合工程菌发酵生产木糖醇。以优化的石灰处理的获得的玉米芯水解液为底物,IS5-dG菌株15 L罐发酵78 h生产的木糖醇浓度为136.7 g/L,时空产率为1.75 g/L/h,这是目前报道的以未经离子交换脱毒的半纤维素水解液为底物,通过大肠杆菌发酵生产木糖醇的最高浓度和时空产率。总之,通过本论文的系统研究,实现了重组大肠杆菌以未经离子交换脱毒的玉米芯水解液为底物生产高纯度木糖醇,为木糖醇的工业化生产奠定了坚实的基础。
周龙霞[3]（2016）在《生物转化法生产木糖醇的研究》文中认为木糖醇是一种五碳糖醇,是微生物代谢木糖产生的中间产物,因为木糖醇具有预防蛀牙、热量低甜度高、食用不会引起人体内血糖的提高以及保肝护肝等许多特殊的性能而广受关注。目前生产木糖醇的主要方法为化学法,但是化学法具有生产条件要求高、污染环境以及浪费资源等缺点,生物转化法生产木糖醇作为化学法的替代生产方法具有反应条件温和、对环境污染小及生产资本低等优点而受到关注。本试验以菌株热带假丝酵母（Candida tropicalis Y-14）为出发菌株,利用等离子诱变、紫外诱变以及紫外-等离子复合诱变等方式对菌株进行诱变育种,筛选获得一株遗传性状稳定的高产木糖醇菌株,命名为C.tropical Y-3-23。菌株C.tropical Y-3-23的木糖醇产量最高为77.42g/L,与对照组出发菌株C.tropical Y-14的木糖醇产量52.06g/L相比,其木糖醇产量提高了48.71%。对菌株C.tropical Y-3-23的培养基组成成分以及摇瓶培养条件进行优化,在单因素试验的基础上结合响应面分析试验得到最佳转化培养条件为:初始木糖添加量102g/L;氮源酵母浸粉添加量为5g/L;初始pH为6.0;培养温度30.5℃;种龄为20h;种子液接种量为10%;摇床转速185r/min;摇瓶装液量为50mL。在此条件下,菌株C.tropical Y-3-23转化木糖生产木糖醇的转化率最大,发酵培养基中的木糖醇含量最大为81.50g/L。将菌株C.tropical Y-3-23进行细胞固定化,利用单因素试验和正交试验相结合的方法得到制备固定化细胞的最佳制备条件为:海藻酸钠浓度为3%、CaCl2浓度为2%、固定化时间为10h。在此条件下对菌株C.tropical Y-3-23进行固定化,得到的固定化细胞与游离的菌株相比,木糖醇产量与转化率等都相差不大,而且固定化的细胞经测定至少可以重复利用15次。
孙也婷[4]（2016）在《榛子壳水解液发酵制备木糖醇的工艺研究》文中提出木糖醇是一种甜度约为蔗糖100%的戊羟基糖醇,为重要化工产物,目前已普遍应用于食品、医药等工业。随着生产木糖醇的主要原料玉米芯成本的不断提高,资源竞争日趋激烈,世界各国对寻求资源替代品的兴趣日益增加。榛子壳中蛋白质等营养含量低,而半纤维素、纤维素等含量较高,是有潜力成为玉米芯替代品的农业废弃物。本研究检测分析了辽宁地产榛子壳主要组成成分,明确榛子壳是发酵制备木糖醇的天然碳源；优化了榛子壳酸解、中和、制备固定化假丝酵母细胞及发酵等制备木糖醇的关键工艺,并考察了固定化细胞的重复使用性能。旨在为有效地利用农业废弃物榛子壳提供新的思路,为应用榛子壳生物法大规模生产木糖醇奠定基础。（1）本论文分别采用马弗炉灼烧法、十二烷基硫酸钠化学法、考马斯亮兰法、索氏提取法检测分析了辽宁地产榛子壳的灰分、半纤维素、纤维素、蛋白质和粗脂肪的含量。榛子壳主要组成成分为：半纤维素36.83±1.23%,纤维素22.34±0.95%,蛋白质1.44±0.19%,粗脂肪4±0.58%,灰分1.34±0.04%。表明榛子壳含有丰富的半纤维素,是生产木糖的良好原料,是发酵制备木糖醇的天然碳源。（2）采用榛子壳为原料,利用稀硫酸水解制备木糖液,分别考察了水解方式、固液比、水解时间和水解温度对木糖浓度的影响。通过响应面分析法,优化得到的酸解最优工艺参数为：稀硫酸浓度为3.21%,水解温度为126.21℃,水解时间为166.32min,固液比为1：6时,木糖浓度最高,达50.52mg/mL,水解液中含有的单糖和发酵抑制物浓度较低。（3）采用石灰乳中和的方法对酸解液进行简单脱毒处理,分别考察了中和温度、中和pH值、中和时间对木糖浓度的影响。通过正交实验分析得到的最佳工艺为：中和温度70℃,中和pH值9,中和时间10min,此时木糖浓度为48.24mg/mL。（4）以经过简单脱毒处理的半纤维素水解液作为发酵碳源,海藻酸钠作为载体固定热带假丝酵母细胞。分别考察了海藻酸钠浓度、氯化钙浓度、固定化时间对木糖醇浓度的影响。利用正交法优化分析了制备固定化酵母细胞的工艺条件：3%海藻酸钠,1%氯化钙,8h固定化时间,木糖醇浓度为26.04mg/mL。（5）将固定化细胞进行回收复用,重复发酵6次后,木糖醇得率均值为45.9±0.98%。表明固定化酵母细胞具体可重复利用性,能够完成6批重复发酵,颗粒完整性较好,体积减少量在标准范围内,稳定性强,节约了成本,相比游离的假丝酵母细胞具有巨大的潜力和优势,更适用于大规模的工业化生产。（6）采用单因素和正交试验相结合的方法,分别考察了初始木糖浓度、摇瓶转速、发酵时间、发酵温度、氮源添加量、固定化酵母凝胶柱与半纤维素水解液培养基体积比、pH值对木糖醇得率的影响。优化分析了摇瓶条件下,影响木糖醇得率的主要因素,确定了最佳的发酵工艺参数为：0～24h转速为210r/min；24～72h转速为120r/min,氮源添加量为5mL,体积比为1：4,木糖醇得率为47.16%。
祝燕燕[5]（2016）在《竹笋壳水解液发酵生产木糖醇的研究》文中进行了进一步梳理竹笋是南方省市的林特产,每年加工竹笋会产生大约百万吨的竹笋壳,基本上都被废弃掉。事实上竹笋壳半纤维素含量丰富,用其生产木糖和木糖醇是很好的原料。为了研究竹笋壳水解液发酵产木糖醇的可行性,首先对竹笋壳半纤维素水解条件进行优化,再以竹笋壳水解液为木糖来源,筛选能产木糖醇的菌株,并对菌株进行诱变和转化条件优化。结果如下:1、对影响竹笋壳半纤维素水解的四个因素:水解时间、水解温度、固液比以及硫酸浓度进行单因素和正交优化。确定了竹笋壳半纤维素水解液的最佳水解方法,即将竹笋壳粉末以1:9（g:mL）)的固液比与质量浓度1.0%硫酸混合,120℃下水解1.5h,在此条件下,木糖质量浓度为（28.99±1.26）g/L。2、用自然筛选的方法,以木糖为唯一碳源,从土样和发霉的竹笋壳中筛选出30株能产木糖醇的菌株,其中以3号菌株产木糖醇能力最高,木糖醇转化率为（45.26±1.21）%。3、用紫外诱变和化学诱变的方法分别对3号菌株进行诱变。紫外诱变结果显示:最佳稀释倍数为10-4,紫外诱变最佳照射时间为150s,通过三轮紫外诱变获得产木糖醇量最高的突变株ZT15,其木糖醇产量为（8.76±0.09）g/L,转化率达到（53.73±0.92）%,比原菌木糖醇转化率提高了8.47%,且5次传代表现出较好的遗传稳定性。亚硝酸钠化学诱变结果显示:最佳稀释倍数10-5,亚硝酸钠诱变最佳诱变时间为5min,通过三轮亚硝酸钠诱变获得产木糖醇量最高的突变菌株HT5,其木糖醇产量为（8.26±0.05）g/L,转化率达到（50.79±0.81）%,比原菌木糖醇转化率提高了5.53%,且5次传代表现出较好的遗传稳定性。4、以ZT15为出发菌株,通过单因素试验和正交试验优化了木糖醇发酵条件和发酵培养基成分。确定最佳工艺条件为:装液量120mL,pH 5.5,接种量8%,发酵温度30℃,转速180 r/min,木糖20 g/L,蛋白胨加酵母膏30 g/L,硫酸铵15 g/L,MgSO4·7H2O 0.2 g/L,发酵48h,静置24h。在此条件下,木糖醇质量浓度为（11.81±0.06）g/L,木糖醇转化率（68.46±0.71）%。
杨其义[6]（2013）在《木糖醇生产菌株的筛选及工艺优化》文中进行了进一步梳理木糖醇是一种低热量的戊糖醇，在自然界中分布广泛，蔬菜、水果、蘑菇等中都有发现。同时也是人体糖类代谢的一种中间代谢产物，每天正常的新陈代谢产生5-15g的木糖醇。近年来，由于其高甜度、低热量和防龋齿的特性，已引起人们的重视。当今，木糖醇的规模化生产主要是在镍的催化下木糖加氢还原制造，成本相对较高，生产安全性差，而微生物生产木糖醇成本低、工艺条件温和，已经引起人们的关注。目前，由于缺乏高效率生物转化木糖生成木糖醇的优良菌株，制约了微生物发酵法生产木糖醇技术的产业化进程。因此，获得优良菌株、优化发酵工艺控制仍是生物转化木糖醇生产研究的重点。本文以木糖为唯一碳源从土壤中筛选得到可以耐受高浓度木糖的菌株，再经过复筛得到一株高产木糖醇的酵母菌株Y-9。经HPLC和红外扫描分析，菌株Y-9发酵木糖的主要产物为木糖醇，木糖转化木糖醇转化率达60%左右。根据菌体的形态特征，生理生化试验及26SrDNA序列测定，初步确定目的菌株为热带假丝酵母，将其命名为Candida tropicalis Y-9。对菌株Candida tropicalis Y-9发酵生产木糖醇的培养基成分和培养条件进行了单因素优化，在单因素优化的基础上，采用响应面法对产木糖醇的发酵培养基进行进一步的优化。确定了影响菌株Candida tropicalis Y-9摇瓶发酵生产木糖醇的主要因素为酵母膏、硫酸铵、硫酸锌，并得到这3个因素的最佳浓度。通过单因素实验和响应面法优化得到的最佳培养基组分为：木糖200g/L、酵母膏4.3g/L、玉米浆10ml/L、（NH4）2SO43.0g/L、ZnSO40.1g/L、MgSO40.2g/L，摇瓶最佳发酵培养条件为：温度30℃、初始pH6.0、装液量40mL/250mL、接种量4％、转速180r/min。在最终的优化条件下，菌株Candida tropicalis Y-9摇瓶发酵96h，转化率达80%，木糖醇生产率达163g/L。在摇瓶发酵优化条件基础下，对菌株Y-9进行了5L发酵罐分批发酵。在5L发酵罐的发酵条件为：装液量3.5L、初始pH6.0、发酵温度30℃、空气压力0.05MPa，经过两级发酵法条件研究最后确定搅拌转速前18h为500r/min，18h后为300r/min培养时间96h，最后得到木糖醇产率达165g/L左右，转化率达到80%以上。并在5L发酵罐上，对木糖醇分批发酵动力学进行了初步研究，建立了菌体生长、产物形成和底物消耗的动力学模型，拟合模型能够较好地反映菌株Y-9分批发酵生产木糖醇的过程。
王显路[7]（2013）在《玉米芯半纤维素水解液发酵法生产木糖醇的研究》文中进行了进一步梳理木糖醇是一种五碳糖醇，甜度与蔗糖相当，是所有食用糖醇中生理活性最好的品种，可作为一种高效的功能性营养添加剂，具有抗龋齿、不易引起血糖波动、改善肝脏功能、减肥等优异特性，除此之外还可以广泛用于化学工业、食品工业、农业等诸多领域。因为木糖醇独特的生理功能近些年成为了紧俏的糖基化学品，需求远远大于供给，市场前景可观。利用农业废弃物生物质资源，采用生物法制备木糖醇反应条件温和、生产成本低廉，工艺安全，操作过程简单，耗能小，低污染，能够实现经济利益，也能做到节能减排，实现可持续发展的需求，是最有优势和前景的生产方法。本实验选择近平滑假丝酵母作为原始菌种发酵生产木糖醇，通过诱变驯化得到高产且耐受性好的菌株，以商品木糖为底物发酵生产木糖醇，初步探寻相关工艺参数，再以半纤维素水解液为底物优化培养基配比，探索最佳发酵条件。主要工作内容如下：（1）考察不同诱变方式下近平滑假丝酵母菌株发酵生产木糖醇的产量，确定最佳诱变方法：等离子体诱变时间4min，筛选出的菌株发酵生产木糖醇产量为73.28g/L，比未诱变组产量提高了26.6%，且残糖很少。其次对菌株进行适应高浓度底物木糖和高浓度高温蒸煮液的驯化，菌体经过高浓度木糖驯化后，以130g/L的底物木糖条件木糖醇转化率可达到67.12%，菌体经过高浓度高温蒸煮液驯化后发酵木糖醇浓度达到66.77g/L，得到对于高浓度木糖和高温蒸煮液可以耐受的优良菌株。（2）优化了优势菌株以商品木糖为底物发酵生产木糖醇的工艺。通过单因素实验和正交实验确定了木糖醇最佳发酵条件：温度30℃，装液量50mL，种龄24h，初始PH6.0，接种量10%，初始木糖浓度100g/L，转速为2步控制0-24h为200rpm，24-72h为150rpm。各因素对发酵的影响顺序：初始PH＞转速＞初始木糖浓度＞接种量＞温度＞装液量＞种龄。（3）针对高温蒸煮液中主要的抑制物进行了单因素添加量对发酵影响的考察，得到了最显着抑制物的浓度，分别为乙酸1.2g/L，丁香酸6.0g/L，香草酸12.0g/L，糠醛2.1g/L，丁香醛4.0g/L。随后在复配培养基中对菌种进行驯化和选育，驯化后的菌种木糖醇浓度为68.21g/L，产量和对照组比较提高了36.82%，残糖量也大大减少了。其次运用响应面统计学方法对发酵培养基进行优化，得到最优的培养基木糖浓度100g/L，氮源、总无机盐浓度各8g/L。再通过单因素实验考察了以高温蒸煮液为底物发酵的关键因素，结合商品木糖底物的优化工艺，最终确定高温蒸煮液上罐发酵条件：温度30℃，种龄24h，初始PH6.0，接种量10%，初始蒸煮液浓度100g/L，两步调节转速控制溶氧，以流加补料方式进行发酵生产木糖醇。最后在2.5L发酵罐中进行放大实验，最终发酵结果：木糖醇73.49g/L，残糖浓度2.12g/L，菌浓度19.73g/L。
张爱民,张道宽,张增博,王惠晶[8]（2012）在《微生物法生产木糖醇的研究进展》文中指出木糖醇是一种重要的食品添加剂,微生物发酵生产木糖醇因其生产过程具有良好的社会经济效益,因而受到广泛关注。就用微生物发酵的方法生产木糖醇涉及到的菌株的筛选、菌株构建、培养基的改良、细胞固定化、发酵工艺、产物的分离等进行综述。
于梅艳,姜巧娟[9]（2012）在《固定化细胞技术在食品工业中的应用研究》文中进行了进一步梳理本文从酿酒、酿醋、酿制酱油、生产果胶酶、生产木糖醇、柑桔汁类果汁的脱苦等几个方面综述了固定化细胞技术在食品工业中的应用。
贾婵媛[10]（2011）在《微生物转化木糖醇研究》文中研究指明木糖醇拥有良好的性质并且用途广泛，但过程复杂导致木糖醇成本较高。论文主要研究了木糖醇高产菌株的选育和转化生产木糖醇的工艺，旨在提高木糖醇转化率，为工业生产奠定基础。具体研究内容和结论如下：（1）首先，从收集的大量菌种中，通过分离培养、薄层层析法筛选，最终分离得到一株产量较高的菌株，为热带假丝酵母JS-3。（2）以筛选得到的热带假丝酵母为出发菌株，通过紫外线和亚硝基胍复合诱变处理，得到一株高产菌株热带假丝酵母JS-3-123-39。该菌株转化木糖能力比出发菌株提高23%，通过遗传稳定性实验证明该突变株具有良好的遗传稳定性。（3）对高产菌株的营养条件进行了优化，研究了培养基中碳源、氮源、金属盐等因素对转化率的影响，通过正交试验和响应面试验得出了最佳培养基组成为（g/L）：木糖3.15、葡萄糖10.25、酵母粉2、蛋白胨3、氯化锌1.66、硫酸镁0.15、磷酸二氢钾4.5；随后对培养条件进行了优化，通过正交试验确定最佳培养条件：温度为30℃，摇床转速为180r/min，初始pH值为5，培养时间为16h，摇瓶装液量为100mL。（4）最后通过单因素实验得出木糖醇转化的最佳转化条件：转化时间为10h，初始pH值为5.5，温度为28℃，250mL摇瓶装液量为100mL，摇床转速为140r/min，底物浓度为20g/L，加入菌体量为10％。木糖醇的生成速率及木糖转化率得到了进一步的提高。最佳转化条件下转化木糖的能力基本稳定，木糖醇转化率达到90％。
二、固定化细胞转化木糖为木糖醇的研究（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、固定化细胞转化木糖为木糖醇的研究（论文提纲范文）
（1）纳米金属粒子耦合的固定化光合细菌转化PHL产氢研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 绪论 |
| 1.1 引言 |
| 1.2 硫酸盐预水解液(PHL)组分的分离与应用研究 |
| 1.2.1 PHL主要组分分离方法 |
| 1.2.2 PHL中主要组分的应用研究现状 |
| 1.3 金属粒子对光发酵制氢的影响研究 |
| 1.3.1 金属离子的添加对生物发酵制氢的影响 |
| 1.3.2 纳米粒子的添加对生物发酵制氢的影响 |
| 1.3.3 生物光发酵处理废水并制氢研究进展 |
| 1.4 固定化微生物技术及其研究进展 |
| 1.4.1 固定化微生物技术的方法和特点 |
| 1.4.2 固定化微生物载体的制备与选择 |
| 1.4.3 固定化微生物处理废水并资源化利用研究进展 |
| 1.5 本论文的研究目的及内容 |
| 1.5.1 研究目的 |
| 1.5.2 研究内容 |
| 1.5.3 技术路线 |
| 2 光合细菌HY01产氢优化及金属粒子对产氢的影响 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 材料和方法 |
| 2.2.1 实验菌株和培养基 |
| 2.2.2 仪器和试剂 |
| 2.2.3 实验方法 |
| 2.2.4 分析测定方法 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 光合细菌HY01的形貌分析 |
| 2.3.2 HY01的产氢特性分析及产氢条件的优化 |
| 2.3.3 HY01中添加不同金属离子的产氢特性分析 |
| 2.3.4 HY01中添加不同纳米金属粒子的产氢特性分析 |
| 2.4 本章小结 |
| 3 游离光合细菌HY01转化PHL模拟液的产氢性能研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 材料和方法 |
| 3.2.1 实验菌株和培养基 |
| 3.2.2 仪器与试剂 |
| 3.2.3 实验方法 |
| 3.2.4 分析测定方法 |
| 3.3 结果与讨论 |
| 3.3.1 苯酚浓度对光发酵产氢的影响 |
| 3.3.2 乙酸浓度对光发酵产氢的影响 |
| 3.3.3 光合细菌利用PHL模拟液产氢特性分析 |
| 3.3.4 树脂对苯酚的解毒及其对产氢的影响 |
| 3.4 本章小结 |
| 4 固定化光合细菌HY01转化PHL模拟液的产氢特性研究 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 材料和方法 |
| 4.2.1 实验菌株和培养基 |
| 4.2.2 仪器和试剂 |
| 4.2.3 实验方法 |
| 4.2.4 分析测定方法 |
| 4.3 结果与讨论 |
| 4.3.1 光合细菌固定化包埋载体的选择与优化 |
| 4.3.2 Fe_3O_4-NPs@HY01复合微球产氢的条件优化 |
| 4.3.3 Fe_3O_4-NPs@HY01复合微球转化PHL模拟液产氢特性分析 |
| 4.3.4 不同的保藏方式和时间对生物产氢的影响 |
| 4.4 本章小结 |
| 5 结论、创新点和展望 |
| 5.1 本论文主要结论 |
| 5.2 创新点 |
| 5.3 展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 |
（2）采用CRP突变及NADPH再生强化改造大肠杆菌IS5-d生产木糖醇（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩写符号术语表 |
| 第一章 绪论 |
| 1.1 木质纤维素生物质资源的转化和利用 |
| 1.1.1 植物纤维资源转化研究背景和现状 |
| 1.1.2 木质纤维素的化学组成与结构 |
| 1.1.3 利用半纤维素的木糖生产木糖醇 |
| 1.2 木糖醇简介 |
| 1.2.1 木糖醇的用途 |
| 1.2.1.1 在食品工业中的用途 |
| 1.2.1.2 在医药工业中的用途 |
| 1.2.1.3 在化学工业中的用途 |
| 1.2.1.4 在日用化工中的用途 |
| 1.2.1.5 在电化学工业中的用途 |
| 1.2.2 木糖醇的市场概述 |
| 1.3 木糖醇的生产 |
| 1.3.1 固液萃取法 |
| 1.3.2 化学加氢法 |
| 1.3.3 生物转化法 |
| 1.3.3.1 野生菌转化木糖生产木糖醇 |
| 1.3.3.2 基因工程菌转化木糖生产木糖醇 |
| 1.4 基因工程改造微生物生产木糖醇的研究进展 |
| 1.4.1 木糖还原酶表达模块的改造 |
| 1.4.2 代谢途径改造 |
| 1.4.2.1 木糖和木糖醇代谢的消除 |
| 1.4.2.2 还原型辅酶再生强化 |
| 1.4.2.3 胞外木糖醇代谢再利用的消除 |
| 1.4.3 分解代谢阻遏效应的消除 |
| 1.4.4 提高木糖转运速率 |
| 1.5 大肠杆菌作为木糖醇生产菌株的改造策略 |
| 1.5.1 进一步消除CCR效应 |
| 1.5.2 双向调控强化NADPH再生 |
| 1.5.3 提高宿主菌的鲁棒性 |
| 1.6 由半纤维素水解液发酵生产木糖醇工业化的主要问题 |
| 1.6.1 发酵原料的预处理 |
| 1.6.1.1 石灰中和 |
| 1.6.1.2 挥发性物质的去除 |
| 1.6.1.3 水解液脱色 |
| 1.6.2 发酵工艺 |
| 1.7 本课题的研究思路与主要内容 |
| 1.7.1 研究思路 |
| 1.7.2 主要研究内容 |
| 第二章 混合碳源同步利用及其在大肠杆菌发酵生产木糖醇中的应用 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.2.1 菌株和质粒 |
| 2.2.2 仪器和设备 |
| 2.2.3 常用试剂耗材、试剂盒及培养基配方 |
| 2.2.4 实验方法 |
| 2.2.4.1 采用CRISPR/Cas9技术构建大肠杆菌基因工程菌 |
| 2.2.4.2 摇瓶发酵 |
| 2.2.4.3 qRT-PCR分析 |
| 2.2.4.4 发酵罐发酵实验 |
| 2.2.4.5 糖和糖醇的HPLC分析 |
| 2.2.4.6 数据分析 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 CRP~*和△ptsG组合改造大肠杆菌同步利用葡萄糖和木糖 |
| 2.3.2 △ptsG和crp~*基因操作对菌株生产木糖醇的影响 |
| 2.3.3 IS5-d和IS5-dI菌株木糖代谢相关基因表达水平的比较 |
| 2.3.4 通过离子交换脱毒的玉米芯水解液发酵生产木糖醇 |
| 2.4 本章小结 |
| 第三章 利用离子交换脱毒的玉米芯水解液生产木糖醇的发酵策略研究 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料和方法 |
| 3.2.1 设备和材料 |
| 3.2.2 以玉米芯水解液为底物的发酵实验 |
| 3.2.3 木糖还原酶的活力测定 |
| 3.2.4 碳源的选择 |
| 3.2.5 种龄的影响 |
| 3.2.6 发酵温度对木糖还原酶活力和木糖醇生产的影响 |
| 3.2.7 溶氧的控制 |
| 3.2.8 氮源的补加方式和用量 |
| 3.2.9 底物的补料时机和补料方式 |
| 3.2.10 葡萄糖的补料方式 |
| 3.2.11 优化条件下的发酵罐发酵实验 |
| 3.2.12 数据分析 |
| 3.3 结果与讨论 |
| 3.3.1 碳源的选择 |
| 3.3.2 种龄对发酵初期工程菌生长速率的影响 |
| 3.3.3 发酵温度对木糖还原酶活力和木糖醇生产的影响 |
| 3.3.4 溶氧的影响 |
| 3.3.5 氮源的补加方式和用量对木糖醇生产的影响 |
| 3.3.6 水解液补料时机和补料方式对木糖醇生产的影响 |
| 3.3.7 葡萄糖的补料方式 |
| 3.3.8 优化条件下以离子交换脱毒的水解液为底物生产木糖醇 |
| 3.4 本章小结 |
| 第四章 强化辅酶再生改造大肠杆菌发酵生产木糖醇 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 菌株和质粒 |
| 4.2.2 仪器和设备 |
| 4.2.3 常用试剂耗材、试剂盒及培养基配方 |
| 4.2.4 工程菌株的构建 |
| 4.2.5 摇瓶发酵实验 |
| 4.2.6 qRT-PCR分析 |
| 4.2.7 内源性辅酶的定量测定 |
| 4.2.8 发酵罐发酵实验 |
| 4.2.9 糖和糖醇的HPLC分析 |
| 4.2.10 数据分析 |
| 4.3 结果与讨论 |
| 4.3.1 PPP基因过表达对胞内氧化还原环境及生产木糖醇的影响 |
| 4.3.2 EMP基因敲除对胞内氧化还原环境及生产木糖醇的影响 |
| 4.3.3 各种PPP基因过表达操作对zwf和gnd基因转录水平的影响 |
| 4.3.4 辅酶改造的工程菌15L罐发酵生产木糖醇 |
| 4.4 本章小结 |
| 第五章 利用石灰处理玉米芯水解液发酵生产木糖醇的工艺过程研究 |
| 5.1 前言 |
| 5.2 材料与方法 |
| 5.2.1 菌株和质粒 |
| 5.2.2 仪器和设备 |
| 5.2.3 常用试剂耗材、试剂盒及培养基配方 |
| 5.2.4 工程菌株的构建 |
| 5.2.5 摇瓶发酵实验筛选木糖醇生产菌株 |
| 5.2.6 硫酸根对菌体生长及木糖醇生产的抑制 |
| 5.2.7 玉米芯水解液的处理 |
| 5.2.7.1 不同种类的碱中和对摇瓶发酵生产木糖醇的影响 |
| 5.2.7.2 石灰中和工艺条件对木糖损失和木糖醇生产的影响 |
| 5.2.8 相转移法去除旋蒸瓶内壁的石膏垢层 |
| 5.2.9 水解液浓缩过程析出的沉淀物的物相及结构表征 |
| 5.2.10 发酵罐发酵实验 |
| 5.2.11 木糖还原酶活力的测定 |
| 5.2.12 糖和糖醇的HPLC分析 |
| 5.2.13 数据分析 |
| 5.3 结果与讨论 |
| 5.3.1 摇瓶发酵实验筛选木糖醇生产菌株 |
| 5.3.2 摇瓶发酵实验中硫酸根对IS5-dG菌株生产木糖醇的抑制 |
| 5.3.3 不同种类的碱中和对IS5-dG菌株摇瓶发酵生产木糖醇的影响 |
| 5.3.4 石灰中和后水解液的pH对木糖损失率的影响 |
| 5.3.5 水解液中和的pH对浓缩过程乙酸去除率的影响 |
| 5.3.6 灭菌温度对木糖损失率的影响 |
| 5.3.7 相转移法去除旋蒸瓶的石膏垢层 |
| 5.3.8 石灰中和水解液浓缩过程的沉淀物的XRD及SEM分析 |
| 5.3.9 利用石灰处理的玉米芯水解液发酵生产木糖醇 |
| 5.3.10 IS5-dG与IS5-dI利用离子交换脱毒的玉米芯水解液生产木糖醇对比 |
| 5.4 本章小结 |
| 第六章 结论与展望 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 论文的创新点 |
| 6.3 展望 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 作者简介及博士期间的研究成果 |
（3）生物转化法生产木糖醇的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 木糖醇的性质 |
| 1.2 木糖醇的应用 |
| 1.2.1 木糖醇在食品工业的应用 |
| 1.2.2 木糖醇在医药行业的应用 |
| 1.2.3 木糖醇在其它行业的应用 |
| 1.3 木糖醇的生产 |
| 1.4 生物转化法生产木糖醇的研究 |
| 1.4.1 生产木糖醇的菌种 |
| 1.4.2 木糖醇在微生物体内的代谢调控 |
| 1.4.3 生物转化法生产木糖醇的主要因素 |
| 1.4.4 生物转化法生产木糖醇的研究趋势 |
| 1.5 课题研究的意义与目的 |
| 1.6 课题研究的主要内容 |
| 第2章 高产木糖醇菌株的诱变筛选 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.2.1 菌种 |
| 2.2.2 主要试剂 |
| 2.2.3 主要仪器 |
| 2.2.4 培养基 |
| 2.2.5 诱变育种 |
| 2.2.6 菌株筛选 |
| 2.2.7 菌体测定 |
| 2.2.8 产物测定 |
| 2.2.9 突变株遗传稳定性测定 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 菌株诱变结果与筛选 |
| 2.3.2 菌株稳定性测定 |
| 2.4 本章小结 |
| 第3章 木糖醇菌株转化条件优化 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 菌种 |
| 3.2.2 主要试剂 |
| 3.2.3 主要仪器 |
| 3.2.4 培养基 |
| 3.2.5 菌株培养方法 |
| 3.2.6 菌体测定 |
| 3.2.7 单因素试验 |
| 3.2.8 显着因素筛选 |
| 3.2.9 响应面分析试验 |
| 3.3 结果与讨论 |
| 3.3.1 单因素试验结果 |
| 3.3.2 显着因素筛选结果 |
| 3.3.3 响应面分析试验结果 |
| 3.4 小结 |
| 第4章 菌株的细胞固定化 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 菌种 |
| 4.2.2 主要试剂 |
| 4.2.3 主要仪器 |
| 4.2.4 培养基 |
| 4.2.5 菌株增殖培养方法 |
| 4.2.6 菌株固定化 |
| 4.2.7 固定化细胞的发酵培养 |
| 4.2.8 单因素试验 |
| 4.2.9 测定方法 |
| 4.2.10 固定化细胞与游离菌株转化性能比较 |
| 4.2.11 固定化细胞增殖与分批发酵 |
| 4.3 结果与讨论 |
| 4.3.1 单因素试验结果 |
| 4.3.2 正交试验结果 |
| 4.3.3 固定化菌株与游离菌株转化性能影响 |
| 4.3.4 固定化细胞重复利用测定 |
| 4.4 小结 |
| 第5章 结论与展望 |
| 5.1 主要结论 |
| 5.2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 在学期间主要科研成果 |
（4）榛子壳水解液发酵制备木糖醇的工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 前言 |
| 1.1 木糖醇的性质与用途 |
| 1.1.1 木糖醇的理化性质 |
| 1.1.2 木糖醇的特性 |
| 1.1.3 木糖醇的用途 |
| 1.2 木糖醇的生产方法 |
| 1.2.1 固液萃取法 |
| 1.2.2 化学法 |
| 1.2.3 生物转化法 |
| 1.3 立题目的及意义 |
| 1.4 研究的主要内容 |
| 第二章 材料与方法 |
| 2.1 材料与试剂 |
| 2.1.1 材料 |
| 2.1.2 试剂 |
| 2.1.3 培养基 |
| 2.2 仪器与设备 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 灰分的测定方法 |
| 2.3.2 半纤维素、纤维素的测定方法 |
| 2.3.3 粗脂肪的测定方法 |
| 2.3.4 蛋白质的测定方法 |
| 2.3.5 榛子壳的预处理 |
| 2.3.6 不同水解方式的影响 |
| 2.3.7 酸水解的单因素试验 |
| 2.3.8 酸水解的工艺优化 |
| 2.3.9 酸解液中和脱酸的单因素试验 |
| 2.3.10 酸解液中和脱酸的工艺优化 |
| 2.3.11 固定化细胞制备的单因素试验 |
| 2.3.12 固定化细胞制备的工艺优化 |
| 2.3.13 固定化细胞的重复使用性能 |
| 2.3.14 发酵生产木糖醇的单因素试验 |
| 2.3.15 发酵生产木糖醇的工艺优化 |
| 2.3.16 固定化细胞与游离酵母细胞发酵水解液的进程比较 |
| 2.3.17 分析方法 |
| 第三章 结果与分析 |
| 3.1 榛子壳各组成成分 |
| 3.2 分析检测 |
| 3.2.1 定性检测 |
| 3.2.2 定量检测 |
| 3.3 不同水解方式对木糖浓度的影响 |
| 3.4 酸水解的单因素试验 |
| 3.4.1 固液比对木糖浓度的影响 |
| 3.4.2 稀硫酸浓度对木糖浓度的影响 |
| 3.4.3 水解时间对木糖浓度的影响 |
| 3.4.4 水解温度对木糖浓度的影响 |
| 3.5 酸水解的工艺优化 |
| 3.5.1 模型建立与显着性检验 |
| 3.5.2 模型交互项解析 |
| 3.5.3 模型验证 |
| 3.6 酸解液中和脱酸的单因素试验 |
| 3.6.1 中和温度对木糖浓度的影响 |
| 3.6.2 中和pH值对木糖浓度的影响 |
| 3.6.3 中和时间对木糖浓度的影响 |
| 3.7 酸解液中和脱酸的工艺优化 |
| 3.8 固定化细胞制备的单因素试验 |
| 3.8.1 细胞中海藻酸钠浓度对木糖醇浓度的影响 |
| 3.8.2 细胞中氯化钙浓度对木糖醇浓度的影响 |
| 3.8.3 细胞固定化时间对木糖醇浓度的影响 |
| 3.8.4 细胞中菌胶比对木糖醇浓度的影响 |
| 3.9 固定化细胞制备的工艺优化 |
| 3.10 固定化细胞的重复使用性能 |
| 3.11 发酵生产木糖醇的单因素试验 |
| 3.11.1 初始木糖浓度对木糖醇得率的影响 |
| 3.11.2 摇床转速对木糖醇得率的影响 |
| 3.11.3 发酵时间对木糖醇得率的影响 |
| 3.11.4 发酵温度对木糖醇得率的影响 |
| 3.11.5 氮源添加量对木糖醇得率的影响 |
| 3.11.6 固定化酵母凝胶珠与半纤维素水解液培养基体积比对木糖醇得率的影响 |
| 3.11.7 初始pH值对木糖醇得率的影响 |
| 3.12 发酵生产木糖醇的工艺优化 |
| 3.13 固定化细胞与游离酵母细胞发酵半纤维素水解液进程的比较 |
| 第四章 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
（5）竹笋壳水解液发酵生产木糖醇的研究（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 缩略词简表(Abbreviations) |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 木糖醇的理化性质 |
| 1.2 木糖醇的用途 |
| 1.2.1 木糖醇在食品工业中的应用 |
| 1.2.2 木糖醇在医药行业中的应用 |
| 1.2.3 木糖醇的其他应用 |
| 1.3 木糖醇的生产方法 |
| 1.3.1 固液萃取法 |
| 1.3.2 化学加氢法 |
| 1.3.3 生物转化法 |
| 1.4 生物转化木糖醇的研究 |
| 1.4.1 微生物发酵木糖醇主要菌株 |
| 1.4.2 微生物发酵木糖醇的代谢途径 |
| 1.4.3 生物转化原料 |
| 1.5 发酵法生产木糖醇的工艺 |
| 1.6 课题研究的主要内容和意义 |
| 第二章 竹笋壳半纤维素水解液的制备 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验材料 |
| 2.2.1 原料 |
| 2.2.2 主要试剂 |
| 2.2.3 主要仪器 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 竹笋壳预处理 |
| 2.3.2 竹笋壳水解 |
| 2.3.3 竹笋壳半纤维素水解条件优化 |
| 2.3.4 竹笋壳半纤维素水解正交实验 |
| 2.3.5 木糖测定方法 |
| 2.4 结果与分析 |
| 2.4.1 木糖标准曲线 |
| 2.4.2 水解温度对竹笋壳半纤维素水解的影响 |
| 2.4.3 固液比对竹笋壳半纤维素水解的影响 |
| 2.4.4 水解时间对竹笋壳半纤维素水解的影响 |
| 2.4.5 硫酸浓度对竹笋壳半纤维素水解的影响 |
| 2.4.6 竹笋壳半纤维素水解正交实验结果 |
| 本章小结 |
| 第三章 竹笋壳水解液生物转化木糖醇菌株的筛选 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 实验材料 |
| 3.2.1 样品来源 |
| 3.2.2 主要试剂 |
| 3.2.3 主要仪器 |
| 3.2.4 培养基 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 菌种初筛 |
| 3.3.2 复筛 |
| 3.3.3 竹笋壳水解液的制备 |
| 3.3.4 水解液的发酵 |
| 3.3.5 测定方法 |
| 3.4 结果与分析 |
| 3.4.1 菌种生长情况 |
| 3.4.2 木糖醇标准曲线 |
| 3.4.3 筛选结果 |
| 本章小结 |
| 第四章 竹笋壳水解液生物转化木糖醇菌株的诱变 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 实验材料 |
| 4.2.1 菌种 |
| 4.2.2 培养基 |
| 4.2.3 主要试剂 |
| 4.2.4 主要仪器 |
| 4.3 实验方法 |
| 4.3.1 紫外诱变 |
| 4.3.2 化学诱变 |
| 4.4 结果与分析 |
| 4.4.1 紫外诱变菌液稀释度的确定 |
| 4.4.2 紫外诱变时间的确定 |
| 4.4.3 三轮紫外诱变及菌株的遗传稳定性试验 |
| 4.4.4 化学诱变菌液稀释度的确定 |
| 4.4.5 化学诱变时间的确定 |
| 4.4.6 三轮化学诱变及菌株的遗传稳定性试验 |
| 本章小结 |
| 第五章 竹笋壳生物转化木糖醇发酵条件优化 |
| 5.1 引言 |
| 5.2 实验材料 |
| 5.2.1 菌种 |
| 5.2.2 培养基 |
| 5.2.3 主要试剂 |
| 5.2.4 主要仪器 |
| 5.3 实验方法 |
| 5.3.1 培养方法 |
| 5.3.2 发酵培养条件优化的单因素实验 |
| 5.4 结果与分析 |
| 5.4.1 发酵培养条件优化的单因素实验结果 |
| 5.4.2 发酵培养条件优化的正交实验结果 |
| 5.4.3 发酵培养基优化的单因素实验结果 |
| 5.4.4 发酵培养基优化的正交实验结果 |
| 本章小结 |
| 结论与展望 |
| 参考文献 |
| 硕士期间发表的论文和专利 |
（6）木糖醇生产菌株的筛选及工艺优化（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 木糖醇的理化性质 |
| 1.2 木糖醇的生理效应 |
| 1.3 木糖醇的应用 |
| 1.3.1 木糖醇在食品中的应用 |
| 1.3.2 木糖醇在医药行业中的应用 |
| 1.3.3 木糖醇在炸药工业的应用 |
| 1.3.4 木糖醇在蓄电池工业中的应用 |
| 1.3.5 木糖醇其它行业中的应用 |
| 1.4 木糖醇的生产方法 |
| 1.4.1 固液萃取法 |
| 1.4.2 化学法生产 |
| 1.4.3 生物转化法 |
| 1.5 生物转化木糖醇的研究 |
| 1.5.1 微生物发酵木糖醇主要菌株 |
| 1.5.2 微生物发酵木糖醇的代谢途径 |
| 1.5.3 生物转化原料 |
| 1.5.4 微生物发酵木糖醇培养基 |
| 1.5.5 木糖醇生产工艺 |
| 1.6 课题研究的主要目的和意义 |
| 1.7 课题研究的主要内容与方法 |
| 1.7.1 主要研究内容 |
| 1.7.2 技术路线 |
| 第2章 产木糖醇酵母菌株的筛选及鉴定 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验材料与方法 |
| 2.2.1 样品来源 |
| 2.2.2 主要试剂 |
| 2.2.3 主要仪器 |
| 2.2.4 培养基 |
| 2.2.5 菌种筛选 |
| 2.2.6 初筛发酵液中木糖残余量，木糖醇产物检测 |
| 2.2.7 复筛木糖、木糖醇定量分析 |
| 2.2.8 生物量测定 |
| 2.2.9 pH 值测定 |
| 2.2.10 可溶性固形物 |
| 2.2.11 产物鉴定 |
| 2.2.12 菌体鉴定 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 产木糖醇菌株的筛选 |
| 2.3.2 菌株代谢产物定性分析 |
| 2.3.3 菌体鉴定 |
| 2.3.4 26S rDNA 序列分析以及系统发育树的构建 |
| 2.4 本章小结 |
| 第3章 酵母转化木糖醇条件优化 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 实验菌株 |
| 3.2.2 主要试剂 |
| 3.2.3 主要仪器 |
| 3.2.4 培养基 |
| 3.2.5 培养方法 |
| 3.2.6 分析方法 |
| 3.2.7 单因素条件优化 |
| 3.2.8 筛选主要因素 |
| 3.2.9 最陡爬坡实验 |
| 3.2.10 响应面分析法 |
| 3.3 结果与讨论 |
| 3.3.1 木糖初始浓度对菌株 Y-9 木糖醇发酵的影响 |
| 3.3.2 葡萄糖为辅助碳源对菌株 Y-9 木糖醇发酵的影响 |
| 3.3.3 最适氮源种类及浓度的确定 |
| 3.3.4 金属离子对菌株 Y-9 木糖醇发酵的影响 |
| 3.3.5 培养基初始 pH 对菌株 Y-9 木糖醇发酵的影响 |
| 3.3.6 最适种龄的确定 |
| 3.3.7 接种量对木糖醇转化的影响 |
| 3.3.8 不同温度对木糖醇发酵的影响 |
| 3.3.9 不同转速对菌株 Y-9 木糖醇发酵影响 |
| 3.3.10 装液量对木糖醇发酵的影响 |
| 3.3.11 确定影响木糖醇的主要因素 |
| 3.3.12 最陡爬坡实验 |
| 3.3.13 响应面分析实验 |
| 3.3.14 菌株 Y-9 木糖醇发酵进程的测定 |
| 3.4 本章小结 |
| 第4章 菌株 Y-9 扩大培养及动力学研究 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 实验菌株 |
| 4.2.2 主要试剂 |
| 4.2.3 主要仪器 |
| 4.2.4 方法 |
| 4.3 讨论与结果 |
| 4.3.1 5L 发酵罐中通氧量对 Candida tropicalis Y-9 发酵的影响 |
| 4.3.2 Candida tropicalis Y-9 菌株分批发酵动态曲线 |
| 4.3.3 分批发酵过程动力学模型 |
| 4.4 本章小结 |
| 第5章 结论与展望 |
| 5.1 主要结论 |
| 5.2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 在学期间主要的科研成果 |
（7）玉米芯半纤维素水解液发酵法生产木糖醇的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 目录 |
| 第一章 绪论 |
| 1.1 引言 |
| 1.2 木糖醇的性质与应用 |
| 1.2.1 木糖醇的性质 |
| 1.2.2 木糖醇在医药行业的应用 |
| 1.2.3 木糖醇在食品工业的应用 |
| 1.2.4 木糖醇的应用前景 |
| 1.3 木糖醇的生产方法 |
| 1.3.1 固液萃取法生产木糖醇 |
| 1.3.2 化学加氢法生产木糖醇 |
| 1.3.3 生物转化法生产木糖醇 |
| 1.4 生物法制备木糖醇的研究进展 |
| 1.4.1 起始底物浓度 |
| 1.4.2 通气率 |
| 1.4.3 接种龄和接种量 |
| 1.4.4 温度、pH 值 |
| 1.4.5 氮源 |
| 1.4.6 其它糖类对发酵的影响 |
| 1.4.7 抑制物 |
| 1.5 本文的研究内容与方法 |
| 第二章 近平滑假丝酵母高产木糖醇菌株的诱变筛选 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.2.1 菌种 |
| 2.2.2 实验材料和仪器 |
| 2.2.3 培养基 |
| 2.2.4 等离子体诱变方法 |
| 2.2.5 紫外诱变的方法 |
| 2.2.6 菌体测定 |
| 2.2.7 发酵液成分分析 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 菌种的诱变与筛选 |
| 2.3.2 高产菌株的驯化与选育 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 近平滑假丝酵母发酵生产木糖醇的工艺优化 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 菌种 |
| 3.2.2 实验材料和仪器 |
| 3.2.3 培养基 |
| 3.2.4 菌种培养方法 |
| 3.2.5 菌体测定 |
| 3.2.6 考察不同影响因素条件对发酵的影响 |
| 3.3 结果与讨论 |
| 3.3.1 初始木糖浓度的考察 |
| 3.3.2 接种量的考察 |
| 3.3.3 初始 pH 的考察 |
| 3.3.4 种龄的考察 |
| 3.3.5 氮源的考察 |
| 3.3.6 温度的考察 |
| 3.3.7 装液量的考察 |
| 3.3.8 转速考察 |
| 3.3.9 葡萄糖添加量的考察 |
| 3.3.10 阿拉伯糖添加量考察 |
| 3.3.11 发酵培养条件的正交实验 |
| 3.3.12 上罐发酵结果 |
| 3.4 小结 |
| 第四章 利用玉米芯半纤维素水解液发酵生产木糖醇 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 菌种 |
| 4.2.2 实验材料和仪器 |
| 4.2.3 培养基 |
| 4.2.4 菌体测定方法 |
| 4.2.5 高浓度抑制物的驯化与选育方法 |
| 4.2.6 玉米芯半纤维素水解液的制备 |
| 4.2.7 以高温蒸煮液为原料发酵生产木糖醇 |
| 4.3 结果与讨论 |
| 4.3.1 不同预处理方法的半纤维素水解液成分对比 |
| 4.3.2 高浓度抑制物的驯化与选育 |
| 4.3.3 高温蒸煮液发酵生产木糖醇的研究 |
| 4.4 小结 |
| 第五章 结论与展望 |
| 5.1 本文主要结论 |
| 5.2 本文创新之处 |
| 5.3 展望 |
| 参考文献 |
| 附录 1 实验所需化学试剂 |
| 附录 2 实验所用仪器 |
| 附录 3 木糖、木糖醇、阿拉伯糖标准曲线的测定 |
| 攻读学位期间的研究成果及发表的学术论文 |
| 致谢 |
| 导师简介 |
| 作者简介 |
（8）微生物法生产木糖醇的研究进展（论文提纲范文）
| 1 产木糖醇的微生物 |
| 2 培养基改良 |
| 3 细胞的固定化 |
| 4 发酵工艺 |
| 5 产物的分离 |
| 6 结语 |
（9）固定化细胞技术在食品工业中的应用研究（论文提纲范文）
| 1 酿酒 |
| 1.1 酿制葡萄酒 |
| 1.2 酿制啤酒 |
| 1.3 酿制果酒 |
| 2 酿醋 |
| 3 酿制酱油 |
| 4 其他 |
| 4.1 生产果胶酶 |
| 4.2 生产木糖醇 |
| 4.3 柑桔汁类果汁脱苦 |
（10）微生物转化木糖醇研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 立题背景 |
| 1.2 木糖醇简介 |
| 1.2.1 木糖 |
| 1.2.2 木糖醇 |
| 1.3 木糖醇用途 |
| 1.3.1 食品药品添加剂 |
| 1.3.2 化工原料 |
| 1.4 木糖醇生产方法 |
| 1.4.1 化学合成法 |
| 1.4.2 生物转化法 |
| 1.5 木糖醇研究现状 |
| 1.5.1 木糖醇转化菌株 |
| 1.5.2 木糖醇代谢途径 |
| 1.5.3 菌种选育方法 |
| 1.5.4 木糖醇生产的进展 |
| 1.6 课题研究的意义和主要内容 |
| 1.6.1 课题研究的意义 |
| 1.6.2 课题研究的主要内容 |
| 第2章 木糖醇转化菌株的自然筛选 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验材料 |
| 2.2.1 实验菌株 |
| 2.2.2 实验试剂 |
| 2.2.3 主要仪器设备 |
| 2.2.4 培养基 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 菌体测定方法 |
| 2.3.2 菌体的培养方法 |
| 2.3.3 木糖醇的转化方法 |
| 2.3.4 木糖醇的测定方法 |
| 2.4 实验结果 |
| 2.4.1 木糖醇标准曲线的制作 |
| 2.4.2 菌株的初步筛选 |
| 2.5 本章小结 |
| 第3章 复合诱变法筛选木糖醇高转化率菌株 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 实验材料 |
| 3.2.1 实验菌种 |
| 3.2.2 主要试剂 |
| 3.2.3 主要仪器设备 |
| 3.2.4 培养基 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 诱变方法 |
| 3.3.2 木糖醇高产菌株的筛选 |
| 3.3.3 菌株稳定性试验 |
| 3.4 结果与讨论 |
| 3.4.1 菌种紫外线诱变 |
| 3.4.2 亚硝基胍化学诱变 |
| 3.5 本章小结 |
| 第4章 热带假丝酵母菌体培养优化 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 实验材料 |
| 4.2.1 实验菌种 |
| 4.2.2 实验材料 |
| 4.2.3 主要设备 |
| 4.2.4 培养基 |
| 4.3 实验原理 |
| 4.4 实验方法 |
| 4.4.1 培养基优化 |
| 4.4.2 菌体培养条件优化 |
| 4.5 检测方法 |
| 4.5.1 干重检测 |
| 4.5.2 木糖醇的测定 |
| 4.6 结果与讨论 |
| 4.6.1 菌体培养基优化 |
| 4.6.2 菌体培养条件优化 |
| 4.7 本章小结 |
| 第5章 生物转化木糖醇条件优化 |
| 5.1 引言 |
| 5.2 实验材料 |
| 5.2.1 实验菌种 |
| 5.2.2 实验材料 |
| 5.2.3 主要设备 |
| 5.2.4 培养基 |
| 5.3 实验原理 |
| 5.4 实验方法 |
| 5.4.1 细胞生长曲线 |
| 5.4.2 转化时间的影响 |
| 5.4.3 转化 pH 值对木糖醇生物转化的影响 |
| 5.4.4 温度对木糖醇生物转化的影响 |
| 5.4.5 装液量对木糖醇生物转化的影响 |
| 5.4.6 转化初糖浓度对木糖醇生物转化的影响 |
| 5.4.7 转化摇床转速对木糖醇生物转化的影响 |
| 5.4.8 加入菌体量对木糖醇生物转化的影响 |
| 5.5 检测方法 |
| 5.6 结果与讨论 |
| 5.6.1 菌体培养液细胞生长曲线 |
| 5.6.2 菌体培养时间对木糖转化率的影响 |
| 5.6.3 转化时间对转化率的影响 |
| 5.6.4 pH 值对转化率影响 |
| 5.6.5 温度对转化率的影响 |
| 5.6.6 溶液量对转化率的影响 |
| 5.6.7 底物浓度对转化率的影响 |
| 5.6.8 转速对转化率的影响 |
| 5.6.9 加入菌体量对转化率的影响 |
| 5.7 本章小结 |
| 第6章 结论与展望 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 在学期间主要科研成果 |
| 一、发表学术论文 |
| 二、其它科研成果 |
四、固定化细胞转化木糖为木糖醇的研究（论文参考文献）
- [1]纳米金属粒子耦合的固定化光合细菌转化PHL产氢研究[D]. 陈朵. 陕西科技大学, 2021(09)
- [2]采用CRP突变及NADPH再生强化改造大肠杆菌IS5-d生产木糖醇[D]. 袁新松. 浙江大学, 2020(02)
- [3]生物转化法生产木糖醇的研究[D]. 周龙霞. 齐鲁工业大学, 2016(05)
- [4]榛子壳水解液发酵制备木糖醇的工艺研究[D]. 孙也婷. 沈阳农业大学, 2016(01)
- [5]竹笋壳水解液发酵生产木糖醇的研究[D]. 祝燕燕. 浙江工业大学, 2016(05)
- [6]木糖醇生产菌株的筛选及工艺优化[D]. 杨其义. 齐鲁工业大学, 2013(04)
- [7]玉米芯半纤维素水解液发酵法生产木糖醇的研究[D]. 王显路. 北京化工大学, 2013(S2)
- [8]微生物法生产木糖醇的研究进展[J]. 张爱民,张道宽,张增博,王惠晶. 食品研究与开发, 2012(04)
- [9]固定化细胞技术在食品工业中的应用研究[J]. 于梅艳,姜巧娟. 生物技术世界, 2012(01)
- [10]微生物转化木糖醇研究[D]. 贾婵媛. 山东轻工业学院, 2011(04)